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时间:2018-05-01
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1、白藜芦醇对大肠癌细胞hTERT表达及其启动子的影响:王晓燕,范钰,张尤历,钟锡明【摘要】目的:观察白藜芦醇对大肠癌细胞生长增殖的影响,并从人端粒酶逆转录酶(humantelomerasereversetranscriptase,hTERT)表达及其启动子方面探讨可能的抗癌机制。方法:以不同浓度的白藜芦醇处理大肠癌LS174T细胞后,收集细胞,分别采用荧光实时定量RTPCR和蛋白质印迹法检测癌细胞hTERTmRNA和蛋白水平。采用脂质体转染法将携带hTERT启动子和报告基因的质粒转染至大肠癌LS174T细
2、胞中后,加入不同浓度的白藜芦醇,孵育48h后,检测报告基因萤虫素酶活性。结果:白藜芦醇处理大肠癌细胞后,增殖明显受到抑制,且与浓度有关。癌细胞hTERTmRNA和蛋白水平明显下调,且呈浓度和时间依赖性。白藜芦醇处理组萤虫素酶活性下降,且呈浓度依赖性。结论:hTERT启动子活性和hTERT表达下调,可能是白藜芦醇抑制癌细胞增殖的重要机制之一。【关键词】白藜芦醇;大肠肿瘤;人端粒酶逆转录酶;启动子 [Abstract]Objective:Toinvestigatetheeffectofresveratrolon
3、humantelomerasereversetranscriptase(hTERT)anditspromoterofhumancolorectalcancercell.Methods:AfterLS174ThumancolorectalcancercellRNAandproteinofhTERTinedbyrealtimePCRand标记探针:5′FAMAGCTCCCATTTCATCAGCAAGTTTGGAATMARA3′。 1.2白藜芦醇对大肠癌细胞增殖的影响 参照文献[9]进行,方法简略如
4、下:以不同浓度(12.5,25,50,100,200,400μmol/L)的白藜芦醇处理大肠癌细胞不同时间(24,48,72h)后,每孔加入5mg/ml的MTT20μl,继续培养4h,去上清。每孔加入二甲基亚砜0.1ml,摇床向上摇动约15min,用酶标仪在波长570nm处计数各孔光密度值(D值)。每组设3复孔。 细胞生长抑制率(inhibitionratio,IR)= 1-转染组试验孔D值空白对照孔D值×100% 1.3白藜芦醇对大肠癌细胞hTERTmRNA水平的影响 1.3.1RNA提取、逆转录c
5、DNA合成根据说明书提取细胞总RNA和合成cDNA。 1.3.2荧光实时定量PCR根据文献[10]进行。50μl反应体系:hTERT基因上、下游引物各1.5μl,FAM1μl,GAPDH探针2.5μl,2×PCRMix缓冲液26μl,cDNA10μl,H2O7.5μl。然后再进行检测,循环反应条件为:50℃,2min,1个循环;95℃,10min,1个循环;95℃,15s,60℃,1min。40个循环。 1.3.3荧光实时定量PCR结果分析测试样本一式3份,进行多次重复。hTERT基因表达的mRNA,以内
6、参照GAPDH基因的表达按照如下公式进行相对定量:cDNAhTERT=cDNAGAPDH×2ΔCT(ΔCT=CTGAPDH-CThTERT)[cDNAhTERT和cDNAGAPDH分别表示hTERT和GAPDH的cDNA量,CTGAPDH及CThTERT表示cDNA经PCR扩增到一定量时的循环数]。 1.4白藜芦醇对大肠癌细胞hTERT蛋白水平的影响 采用蛋白质印迹法检测。收集细胞,用预冷的磷酸盐缓冲液洗2次,加入细胞裂解液,在冰面上静置10~20min,用细胞刮匀浆后,4℃,离心10min,转速1500
7、0r/min,取上清,加入1/3体积的4×上样缓冲液,煮沸10min使蛋白变性。样品蛋白经凝胶电泳分离、电转移至硝酸纤维素膜,室温封闭1h后加入hTERT单克隆抗体(1∶500),4℃孵育过夜。漂洗后加入辣根过氧化物酶标记的羊抗兔IgG(1∶500),37℃孵育1h,漂洗后用ECL显色,曝光,冲洗胶片。 1.5大肠癌细胞hTERT启动子活性测定 1.5.1质粒转染大肠癌LS174T细胞以5×105/孔接种于6孔培养板,24h后根据脂质体说明书进行转染。将待转染质粒以脂质体DNA复合物的形式(比例为1∶
8、10)加入上述细胞培养孔中,同时转染内对照SV40质粒。3复孔,重复3次。 1.5.2萤虫素酶活性测定质粒转染2h后加入不同浓度的白藜芦醇,24h后更换含10%胎牛血清的新鲜培养液及相应浓度的白藜芦醇,于37℃细胞培养箱继续培养24h后,用预冷的PBS洗3遍,消化收集细胞,加入1×PLB裂解液处理细胞后,用荧虫素酶试剂盒及萤虫素酶测定仪测定萤虫素酶活性。 1.6统计学处理 所得数据用±s表示,
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