探讨smad7对acta-smads通路的调控机制

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1、探讨Smad7对ActA/Smads通路的调控机制  激活素A(ActivinA,Act A)是转化生长因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)超家族成员之一,其作为ActA/Smads信号通路的第一信使,通过触发下游细胞内Smads级联反应,完成具有一定生物学功能的信号转导过程。前期研究发现ActA/Smads通路具有抗缺血损伤的神经保护作用。但其相关信号转导及调节机制尚需进一步研究,本研究以该通路中重要的细胞内调节因子Smad7

2、为靶点,利用RNA干扰技术抑制Smad7基因表达,检测其对PC12细胞OGD损伤及ActA/Smads通路活化水平的影响,探讨Smad7对ActA/Smads通路的调控机制。  1材料和方法  1.1主要材料  大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤PC12细胞系购自中国医学科学院肿瘤细胞库。兔抗大鼠ActA、Smad7、β-actin抗体购自Santa公司,羊抗兔二抗购自鼎国公司,鼠神经生长因子(NGF)购自Sigma公司,Tr-izol总RNA提取试剂盒购自上海生工公司,Quant-script cDN

3、A合成试剂盒、Real Master Mix(SYBRGreen)试剂盒购自天根公司。Smad7和内参GAP-DH基因引物委托上海生工合成。  1.2实验方法  1.2.1 PC12细胞培养及神经元转化含10%马血清及15%胎牛血清的高糖DMEM培养基常规培养PC12细胞,2-3天换液后,当细胞接近80%融合时,胰酶消化传代。细胞贴壁后加入终浓度为50ng/ml的NGF,连续刺激7天以诱导细胞神经元样转化。  1.2.2氧糖剥夺模型的建立神经元样PC12细胞经含有10%胎牛血清和1.0mol/L N

4、a2S2O4的无糖DMEM培养液培养16h,建立OGD16h组。  1.2.3大鼠Smad7基因的siRNA合成设计大鼠Smad7基因的siRNA,正义链5-aacgaucugcgcucguccggcgudtdt-3;反义链3-dtdtuugc-uagacgcgagcaggccgca-5。SiRNA及阴性对照基因序列委托吉凯生物有限公司合成。  1.2.4 siRNA转染及分组24孔板内细胞80%融合时行转染,于前一天将培养液更换为不含血清及抗生素的高糖DMEM,分别转染靶向Smad7基因的siRN

5、A,阴性siRNA及对照PBS,建立阳性转染组,阴性转染组及空转染组,转染浓度50nM,24h后行OGD16h。  1.2.5 Smad7基因mRNA的表达检测收集细胞,Trizol法提取总RNA,逆转录为cDNA。应用ABI7500Fast型实时荧光定量PCR仪对Smad7基因及内参GAPDH mRNA的表达进行检测。引物序列如下:Smad7上游5'-TCCTGCTGTG-CAAAGTGTTC-3',下游5'-AGT AAGGAG-GAGGGGGAGAC-3',片段大小:104bp;GAPDH上游

6、5'-GGT TACCAGGGCTGCCTTCT-3',下游5'-ATGGGTTTCCCGTTGATGAC-3',片段大小:171bp。结果应用Relative Quantification(ddCt)Study软件行相对定量分析。检测实验重复三次。  1.2.6 MTT细胞存活率检测  三组细胞以1104个/孔接种于96孔板,每组10个复孔,各组随机选择5个复孔行OGD16h,每孔加人20μl的MTT(5mg/ml)37℃孵育4h后弃去培养液,加入200μl的二甲基亚砜溶解蓝紫色结晶,

7、充分振荡溶解,应用酶标仪在490nm激发波长测吸光度(A)。OGD16h的A值与OGD0h的A值比较,计算每组细胞存活率。检测实验重复三次。  1.2.7 Smad7和ActA的蛋白水平检测  神经元样PC12细胞,经OGD16h处理的阳性及阴性转染组细胞分别消化离心,利用含有1%PMSF的RI-PA裂解提取总蛋白,SDS-PAGE电泳,转膜,封闭,而后分别用兔抗大鼠Smad7(1∶500)和ActA(1∶500)一抗4℃过夜孵育,洗膜,羊抗兔二抗(1∶500)37℃孵育2h,ECL显影压胶片。  

8、1.3统计学分析  应用SPSS10.0软件包,计量资料用x珚±s描述,均数间比较采用独立样本t检验,多个均数比较采用单因素方差分析,P<0.05视为有统计学意义。  2结果  2.1 Smad7siRNA沉默效果检测  应用Real Time RT-PCR检测Smad7mRNA的表达变化,阳性转染组Smad7mRNA表达水平(0.32±0.13)较阴性转染组显着下调(0.68±0.14)(见图1)。    2.2 Smad7

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