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时间:2018-01-01
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1、白色链霉菌发酵生产ε—聚赖氨酸工艺优化 摘要:采用白色链霉菌N31-69菌株发酵制备ε-聚赖氨酸,考察碳源、氮源等因素对ε-聚赖氨酸产量的影响,优化发酵培养基。结果表明,优化的培养基为葡萄糖、(NH4)2SO4和酵母浸出粉的浓度分别为30、7、7g/L,ε-聚赖氨酸摇瓶发酵产量达1.519g/L,比优化前的产量提高了28.0%。进一步对N31-69菌株在5L发酵罐内的发酵工艺进行优化,发现发酵48h后采用流加补糖方式控制还原糖浓度为10~15g/L,从72h开始控制pH为4.3,发酵168h后ε-聚赖氨酸的产量可达15.60
2、g/L。关键词:白色链霉菌(Streptomycesalbus);ε-聚赖氨酸;培养基;发酵工艺中图分类号:TS202.3文献标识码:A文章编号:0439-8114(2013)15-3635-04ε-聚赖氨酸由25~30个赖氨酸残基聚合而成,有很强的抑菌能力[1],被FDA批准为安全的天然生物防腐剂,具有巨大的商业潜力[2]。日本窒素公司已实现ε-聚赖氨酸微生物发酵的工业化生产,发酵罐产量达48.309g/L[3,4]。而国内ε-聚赖氨酸的研究还处于实验室水平,发酵产量与国外差距很大。刘长江等[5]优化了发酵培养基和培养条件,
3、ε-聚赖氨酸摇瓶产量为1.50g/L;陈玮玮等[6]对北里孢菌KitasatosporaMY5-36发酵产ε-聚赖氨酸的条件进行优化,摇瓶发酵产量达1.17g/L,在5L发酵罐内批式发酵产量达7.72g/L;黄国昌等[7]在50L自控式发酵罐中对ε-聚赖氨酸的发酵条件进行研究,发酵产量最高达7.36g/L。本研究采用白色链霉菌(Streptomycesalbus)N31-16菌株发酵制备ε-聚赖氨酸,考察碳源、氮源、无机盐等因素对发酵的影响,以提高ε-聚赖氨酸产量,为促进ε-聚赖氨酸的工业化生产提供依据。1材料与方法1.1菌种
4、来源白色链霉菌N31-16菌株,赣南医学院微生物实验室筛选保藏[8]。1.2白色链霉菌发酵生产ε-聚赖氨酸流程1.2.1斜面培养斜面培养基包括酵母浸出粉4g/L、麦芽浸出粉10g/L、葡萄糖4g/L,pH7.3。接种环取一环平板上单菌落的孢子至斜面,置于30℃培养箱中培养4~6d。1.2.2摇瓶种子培养摇瓶种子培养基为M3G[9],含有葡萄糖50g/L、(NH4)2SO410g/L、K2HPO40.8g/L、KH2PO41.36g/L、MgSO4·7H2O0.5g/L、ZnSO4·7H2O0.04g/L、FeSO4·7H2O0
5、.03g/L、酵母浸出粉5g/L,pH96.8,装液量为250mL的三角瓶中装20mL培养基。接种环取一环斜面孢子,接入种子培养基,在30℃、摇床转速220r/min的条件下培养1d。1.2.3摇瓶发酵培养摇瓶发酵培养基以M3G培养基为基础,添加不同的碳源、氮源和无机盐,考察其对菌体生长和ε-聚赖氨酸产量的影响,接种量为5%(占发酵液体积比,下同),其他培养条件同摇瓶种子培养。考察某一影响因素时保持其他培养基成分不变,以M3G培养基为对照,其ε-聚赖氨酸相对产量为100%,每处理设置3组平行试验。1.2.4发酵罐发酵工艺的优化
6、接种量3%,加入优化后的发酵培养基,发酵温度30℃,转速200~700r/min,通气速率2~5m3/min。分别采用3种工艺进行发酵,比较各种工艺对菌体生长和ε-聚赖氨酸产量的影响。①工艺一:发酵液中还原糖浓度降至15g/L以下后,每隔24h间歇补糖至25g/L,pH降至4.3后用氨水控制pH维持在4.3。②工艺二:还原糖浓度降至15g/L以下后,用流加补糖方式控制发酵液中还原糖浓度为15~20g/L,pH降至4.3后用氨水控制pH维持在4.3。③工艺三:还原糖浓度降至15g/L以下后,采用流加补糖方式控制还原糖浓度为10~
7、15g/L,72h后用氨水控制pH维持在4.3。1.2.5指标测定①干重。发酵结束后将发酵液于12000r/min离心3min,弃上清,沉淀洗涤3次,1089℃下干燥至恒重后称重。②菌体浓度(PackedMassVolume,PMV)。取10mL发酵液于4000r/min离心10min,测定上清液体积。PMV=(发酵液总体积-上清液总体积)/发酵液总体积×100%。③残糖含量。采用斐林试剂法测定发酵液中残糖含量。④ε-聚赖氨酸含量。采用优化后的Itzhaki法[4]测定发酵液中ε-聚赖氨酸含量。2结果与分析2.1摇瓶发酵培养基
8、的优化2.1.1碳源对白色链霉菌发酵生产ε-聚赖氨酸的影响分别选用葡萄糖、土豆淀粉和玉米淀粉作为碳源,每种碳源各取3个水平,共9个处理。不同碳源对白色链霉菌菌体生长和ε-聚赖氨酸产量的影响结果见表1。由表1可知,3种碳源中,葡萄糖为碳源时发酵效果最好,有利于菌株的生长和ε-聚
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