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时间:2020-09-04
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1、目的基因的克隆、转化及重组子筛选一.实验目的:(1)学习和掌握DNA片段胶回收的方法。(2)学习DNA连接的有关技术。(3)掌握用CaCl2法制备感受态细胞的原理和方法。(4)学习和掌握质粒DNA的转化和重组质粒的筛选方法。(5)掌握质粒提取的基本方法。(6)学习和掌握限制性内切酶的使用方法。二.实验原理:(1)cDNA的TA克隆:Taq酶能够在PCR产物的3’末端加上一个非模板依赖的A,而T载体是一种带有3’T突出端的载体,在连接酶作用下,通过粘性末端连接,把PCR产物插入到质粒载体的多克隆位点,称为T-A克隆。可用于PCR产物的克隆和测序。
2、(2)感受态细胞制备原理:细菌处于容易吸收外源DNA的状态叫感受态,细菌处于0℃,CaCl2的低渗溶液中,细胞膨胀,细胞壁通透性增强,在冷热变化刺激下细胞膜表面产生裂隙,使外源DNA进入。(3)蓝白斑筛选:载体带有一个LacZ基因的调控序列和头146个氨基酸的编码信息,编码α-互补肽;宿主细胞编码C端部分序列。诱导物IPTG和乳糖的结构相似,可以与乳糖操纵元的阻遏蛋白结合,从而解除阻遏蛋白的作用,使载体得以合成α-互补肽,与宿主细胞编码的C端部分结合形成β-半乳糖苷酶,而X-Gal是β-半乳糖苷酶的显色底物,在β-半乳糖苷酶的催化下会产生蓝色产
3、物。可用于重组克隆的筛选,重组克隆无法产生α-互补肽,因而无法使X-Gal显色,培养基上表现为白色菌落。三.实验材料:大肠杆菌DH5a、LB培养基、0.1mol/LCaCl2DNA割胶回收试剂盒,试管,Amp/IPTG/X-Gal,三角玻璃棒,玻璃珠,牙签,1µlpMD19-TVector、质粒提取试剂盒。四.实验步骤、现象、结果及分析:(1)cDNA电泳及胶回收1.提取总RNA,反转录cDNA,用设计好的引物扩增出不同的目的片段。取目的基因产物进行琼脂糖电泳,紫外灯下切胶。2.把所割胶放入1.5mlEP管,称重如下表一。表一:cDNA琼脂糖凝
4、胶重量空管2管3管重量(g)0.90451.22801.2961净重(g)0.32350.39163.按1g/1ml的量,大致各加入400µlBindingBuffer,65℃水浴7min;(每隔2-3min,摇一下);4.把溶液转移至spin-column,10000g离心1min,倒出套管内残液;5.在柱子中加入300µlBindingbuffer,10000g离心1min,倒出套管内残液;6.在柱子中加入700ul的SPW溶液,放置3min,10000g离心1min,去残液;7.10000g离心1min(去乙醇);8.把柱子放入干净的1.
5、5mlEP管。加ElutionBuffer20µl。室温放置1min,10000g离心1min。79.检测DNA的纯度和浓度,如下表二所示。选取质量好的2号组进行接下来的连接转化。表二:cDNA吸光度测定2组3组A260/A2801.8641.867浓度(ng/µl)146.718128.242(2)感受态细胞制备1.从新鲜培养的LB平板上挑单个DH5a大菌落接种到3mlLB培养液中,37℃剧烈振荡培养过夜(教师准备)。2.取过夜培养的大肠杆菌DH5a按1:50取1ml菌液接种到50mlLB培养基中,37℃振荡培养,1hr后用分光光度计测其OD
6、值为0.182,1.5hr后再测其OD值,为0.304,到达其对数生长期(细菌对数生长期OD600为0.2-0.4)。3.分别取1ml菌液至1.5ml离心管中标记为1号、2号、3号,培养物冰上放置10min,5000r/min,离心2min,用枪头吸取废液,弃去,收集底部菌体。4.分别加入500µl预冷的0.1mol/LCaCl2,用枪头吹散,使菌体悬浮于预冷的CaCl2中,冰上放置10分钟。5.离心机5000r/min,离心2min,用枪头吸取弃上清,分别加入100µl预冷的0.1mol/LCaCl2,小心用枪头吹散,0℃保存3hr。(3)连
7、接和转化组别实验组正对照组负对照组操作连接:从2号胶回收DNAEP管中取4µl,加入1µlpMD19-TVector、5µlSolutionⅠ组成10µl连接反应体系,在16℃下进行连接反应;转化:30min后加入1号100µl感受态细胞EP管中,以手指轻轻触碰混匀,冰中放置30min进行转化,接着42℃热激45sec,再在冰中放置1min,最后加入390µlLB液体培养基于37℃振荡培养50min。取1µl(5ng/µl)质粒加入2号100µl感受态细胞EP管中。无需取任何物质加入3号100µl感受态细胞EP管中。样品组-100µl:从上述5
8、00µl体系中取100µl加入LB/Amp/IPTG/X-Gal平板,最后加入玻璃珠,摇动混匀,于37℃倒置、过夜培养。样品组-200µl:从上述50
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