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时间:2020-08-06
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1、基本概念及原理 Southern印迹杂交是进行基因组DNA特定序列定位的通用方法。一般利用琼脂糖凝胶电泳分离经限制性内切酶消化的DNA片段,将胶上的DNA变性并在原位将单链DNA片段转移至尼龙膜或其他固相支持物上,经干烤或者紫外线照射固定,再与相对应结构的标记探针进行杂交,用放射自显影或酶反应显色,从而检测特定DNA分子的含量[1][2]。基本方法及主要步骤 Southern印迹杂交的基本方法包括四部分,以下以植物southern印迹杂交为例。 (1)植物基因组DNA提取; (2)DNA的限制性内切酶酶解、电泳和Southern转移; (3
2、)探针的标记和纯化; (4)杂交、洗膜、检测以及去除膜上探针。 主要操作步骤: 1.琼脂糖电泳 (1)取一定量的待测DNA样品,用适当的限制性内切酶酶切。DNA的量根据样品的种类及实验目的的不同而异,对于克隆片段的限制性内切酶图谱分析,取0.1-0.5μg即可;而对于鉴定基因组DNA中的单拷贝基因序列,则需要10~20μg;当采用寡核苷酸探针或探针的比放射性活性较低时,则需要30~50μg。 (2)酶切完毕,在琼脂糖凝胶中电泳。 (3)电泳结束后,EB染色,长波紫外线下观察电泳结果及照相。 2.印迹转移 (1)切胶并作标记(左下角切除
3、),以便于定位,然后将凝胶置于一容器中。 Southern印迹杂交转膜示意图(2)将凝胶浸泡于适量的变性液中,室温下放置1h使之变性,不间断地轻轻摇动。变性缓冲液:1.5mol/LNacl0.5mol/LNaOH (3)将凝胶用去离子水漂洗1次,然后浸泡于适量的中和液中30min,不间断地轻轻摇动。更换中和液,继续浸泡15min。 (4)将滤纸,硝酸纤维素膜NC膜(以下简称NC膜)剪成与胶同样大小,NC膜浸入转移buffer中平衡30min。 (5)按右图操作:逐层铺平,各层之间勿留有气泡和皱折。(6)虹吸转移12-16h。转膜液:1.0mo
4、l/LNacl0.4mol/LNaOH3.固定DNA碱性转移不需要固定,在中性缓冲液中室温15分钟。(1.0mol/LNacl0.5mol/LTris-Cl1 )(1)取出转移后的NC膜,用滤纸吸干NC膜,NC膜光面朝上平铺于变性液中变性5min。 (2)用相同的方法将NC膜平铺在中性液上,中和两遍,每遍5min。 (3)将膜夹在两张干燥滤纸间,80℃烘烤1-2h。 4.预杂交 (1)将膜浸入5×SSC中2min,将膜放入干净的塑料袋中。 (2)将预杂交液事先在65℃预热,然后将10ml预杂交液加入袋中,封口。 (3)65℃预杂交1h以
5、上,不时摇动。 5.杂交 (1)取出杂交袋,剪去一角去除杂交液后,加入5ml杂交液及5μl变性探针,排除气泡后封口。 (2)将杂交袋放入65℃水中杂交过夜。 6.按下列条件洗膜(1)剪开杂交袋,用镊子取出膜,放入装有20mL的2×SSC0.1%SDS溶液的平皿中,在室温下振荡洗涤两次,每次5分钟。(2.)用镊子将膜转入0.1×SSC,0.1%SDS溶液(先放50℃水浴预热)中,50℃水浴振荡洗涤两次,每次15分钟。(3)用镊子将膜取出转入装有20mL洗涤缓冲液的平皿中振荡洗涤5分钟。7.信号检测(1)所需试剂:请按下表组分准备所需试剂。溶液组
6、分/制备洗涤缓冲液0.1M顺丁烯二酸,0.15MNaCl;pH7.5(20°C);0.3%(v/v)Tween-20顺丁烯二酸缓冲液0.1M顺丁烯二酸,0.15MNaCl;用NaOH调节到pH7.5(20°C)检测缓冲液0.1MTris-HCl,0.1MNaCl,pH9.5(20°C)TE-缓冲液10mMTris-HCl,1mMEDTA,pH8.0(2)制备试剂盒工作液溶液组分/制备阻断液用顺丁烯二酸缓冲液1:10稀释10×阻断液,制备成1×工作液。抗体溶液每次使用前,需10,000rpm离心抗Dig-AP酶结合物5分钟,从表面小心吸取所需的量。用阻
7、断液按1:5000稀释抗体。显色底物液加200ulNBT/BCIP到10ml检测缓冲液中。(3)流程:在培养皿上进行信号检测。注意:所有孵育过程应在15-25°C下搅动进行,如果膜要用于再杂交,则不要让膜在任何时候变干。步骤操作1在杂交和严谨洗涤后,在洗涤缓冲液中浸润1-5分钟。2在30ml阻断液中孵育30分钟。3在10ml抗体液中孵育30分钟。4用30ml洗涤液洗涤2x15分钟。5在15ml检测缓冲液中平衡2-5分钟。6在避光条件下,于10ml新鲜制备的显色底物液中反应显色。在显色过程中勿摇动。注意:在几分钟内即有颜色开始沉淀,并在16h后完成反应
8、。为检测显色程度,膜可以短时间暴露于光线下。7当达到所需的点或带强度后,用50ml双蒸水或TE-缓冲液将膜漂
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