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时间:2017-12-08
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1、southern杂交实验方法和步骤一、主要仪器:离心机恒温水浴锅Orbitalshaker恒温摇床PonerPAC300核酸电泳仪VersaDoc凝胶成像系统水平摇床HL-2000Hybrilinker分子杂交仪烘箱二、主要材料whatman3mm滤纸尼龙膜吸水纸玻璃板玻璃棒废旧胶片方形果盘平板三、主要试剂RNaseA真菌基因组提取试剂盒DIG-HighPrimeDNALabelingandDetectionStarterKitIDNAMakerNaOH,NaCl,浓盐酸,Tris碱,柠檬酸钠,马来酸四、试剂准备变性液:0.5m
2、ol/LNaOH,1.5mol/LNaCl;Southernblot中和液:0.5mol/LTris-HCl(pH=7.5),1.5mol/LNaCl;20×SSC:3mol/LNaCl,0.3mol/L柠檬酸钠,浓盐酸调节pH至7.0;2×SSC:取100mL20×SSC溶液,灭菌去离子水定容至1L;2×SSC+0.01%SDS:取100mL20×SSC溶液,10mL10%SDS,灭菌去离子水定容至1L;0.5×SSC0.01%SDS:取25mL20×SSC溶液,10mL10%SDS,灭菌去离子水定容至1L;洗涤缓冲液:0.1
3、M马来酸,0.15MNaCl,pH7.5,0.3%(v/v)Tween20;马来酸缓冲液:0.1M马来酸,0.15MNaCl,用NaOH(固体)调节pH值至7.5;检测缓冲液:0.1Tris-HCl,0.1MNaCl,pH9.5;威斯腾生物400-675-6758封阻溶液:将DIG试剂盒内的6号瓶置于37℃水浴锅中预热,充分溶解后,取12mL,与108mL马来酸缓冲液混匀备用(新鲜配制,立即使用);抗体溶液:将DIG试剂盒内的4号管10000rpm高速离心5min,取4µL上清,加入20mL封阻溶液中,备用;底物显色液:取20m
4、L检测缓冲液,避光加入400µLDIG试剂盒内的5号管。五、实验安排确定实验样本,查找序列,进行酶切位点及探针设计,并合成引物;培养样本,配制杂交所用试剂,PCR探针合成,回收,质量检测,DIG标记探针;提取样本基因组,检测基因组质量,酶切预实验;正式酶切,电泳,转膜;烘干固定,预杂交,杂交过夜;洗膜,显色。六、大量真菌基因组的提取取绿僵菌孢子接种于20mL的1/4SDAY培养液中,250rpm×28℃培养2d;抽滤收集菌丝,灭菌水冲洗3次以上;将抽滤的菌丝加液氮速冻后研磨成粉末,研磨3次以上,取约500mg粉末至2mL的离心管
5、中,按照真菌基因组提取试剂盒的方法步骤依次进行操作:①加入400μL的LEBuffer,震荡使其充分混匀,再加入4μL的100mg/mL的RNaseA,混匀,置于65℃水浴锅中温浴半小时;②加入130μLDABuffer,混匀后冰浴5min后14000g高速离心3min;③将离心后上清转移到新的1.5ml的PE管中,加入750μLEBindingBuffer,充分混匀,将混合液体转移到Spincolum中,6000g离心1min,弃去管中液体;④向Spincolum中加入500μLGBindingBuffer,10000g高速离
6、心30s,弃去管中液体;⑤向Spincolum中加入600μLWashBuffer,10000g高速离心30s,弃去管中液体;⑥重复上一步;⑦再次将Spincolum于10000g高速离心1min,并将Spincolum放置在一个新的1.5ml离心管上;⑧室温静置3min,向Spincolum中加入40μL灭菌去离子水,室温放置1min,12000g高速离心1min。检测提取得到的基因组的质量和浓度。威斯腾生物400-675-6758七、Southernblot验证敲除转化子①基因组酶切:将敲除转化子和野生型菌株的基因组用X1和
7、X2双酶切,反应体系如下:10×FDbuffer4.5μlX12μlX22μl样品DNA6μgddH2O水至45μl总体积45μL37℃恒温反应2h。②电泳分离酶切1.5h后,取2μL酶切DNA样品于1%的琼脂糖凝胶上进行检测,判断酶切程度。当酶切充分时,制备1%的琼脂糖电泳凝胶,样品中加入10×loadingbuffer,于30-40V稳压电泳4-5h(包括DNAMarker和阳性对照质粒),电泳完成之后,切下样品及质粒部分的凝胶,剩余DNAMarker部分则单独浸泡在添加了10μL10mg/ml溴化乙锭(EB)的100mL1
8、×TAEbuffer中染色30min。③电泳凝胶预处理1)将凝胶浸于适量变性液中(浸没凝胶),室温,于水平摇床上低速晃动15min,并重复一次;2)再将凝胶浸于灭菌的ddH2O中,室温,轻轻晃动10min;3)将凝胶浸在中和液中,室温轻轻晃动15min,并重复一
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