定量PCR基本原理及方法课件.ppt

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1、定量PCR基本原理及方法基因有限公司黄妤荧光定量PCR基本原理荧光定量PCR标记方法荧光定量PCR不同方法学的应用内容定量PCR技术的产生1992年由Higuchi等人第一次报告：使用EB加入PCR反应体系，经改装的带有冷CCD的PCR仪检测样品的荧光强度核酸↔染料荧光后来用与双链DNA有更强结合力的SYBRGreenI取代EB荧光定量PCR基本原理Real-timeChemistriesPCR的理论方程：Y=x×(1+Ev)nY：扩增物数量；X：起始模板数量；Ev：扩增效率；n：扩增循环数1.终点法定量原理前提：在最佳实验、循环次数n一定、Ev相同原理：根据扩增产物的量计数反应物中原始分子

2、数，即：lnx=lnY-n×ln(1+Ev)=lnY-b(b为常数)2.实时检测法定量原理前提：在最佳实验、相同Ev以、扩增产物量相同原理：反应物中原始分子数（X）与其所需要的扩增循环次数（n）成反比，由此计算出标本中靶分子的准确含量，即：LgX=LgY–n×Lg(1+Ev)=b-n×a(a、b为常数)荧光定量PCR的定量原理阈值：PCR扩增信号进入相对稳定的对数增长期时的荧光值。阈值（threshold）的设定PCRefficiency=[10(-1/slope)]-1Whereslope=1/mSlope-3.322100%efficiencyPCR循环在到达Ct值所在的循环数时，刚刚进

3、入真正的指数扩增期（对数期），此时微小误差尚未放大，因此Ct值的重现性极好，即同一模板不同时间扩增或同一时间不同管内扩增，得到的Ct值是恒定的。Ct值——n：扩增循环数n:扩增循环数的确定logN=logN0+nlogEn=Ct每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系。利用已知起始拷贝数的标准品作出标准曲线，根据未知样品的Ct值，即可计算出该样品的起始拷贝数。Ct值与起始模板的关系Y轴—Ct值X—起始拷贝数的对数标准曲线由系列稀释的已知浓度的样品做标准曲线计算待测样品的初始模板浓度logN0=-CtlogE+logN绝对定量——未知浓度的样品与标准曲线相比较内掺式染料SYBRG

4、reenI,LCGreen序列特异性探针TaqmanMolecularBeaconsFRET引物特异性探针Amplifluor(Intergen)LUX荧光定量PCR标记方法5’3’5’3’SGExcitationSGSGSGSGEmission内掺式染料SYBR-GreenI5’3’5’3’SGSGSGSGSGExcitationEmission内掺式染料SYBR-GreenIRQ5’3’5’3’5’3’5’3’ExcitationRQQRQRExcitation双标记探针（TaqmanProbe）RQExcitationRQQRExcitationEmission分子信标（Molecul

5、arBeaconProbe）Oligo1:FluoresceinOligo2:LCRed640ExcitationEmissionTransfer荧光共振能量传递（FRETProbe）荧光定量PCR不同方法学的应用研究目的标记方法定量分析（基因拷贝数的绝对定量，基因表达调控的相对定量）Sybr-Green(LCGreen),Taqman,MolecularBeacon,etc研究目的基因型分析（SNP、突变型分析）Taqman,MolecularBeacon,FRET,LCGreen熔解曲线分析Sybr-Green,LCGreen,MolecularBeacon,FRET某科研用户使用Rot

6、or-Gene3000进行基因表达检测结果（自备标准品，检测样品做复管）绝对定量某科研用户使用Rotor-Gene3000进行基因表达相对定量分析，下图为用∆∆Ct法得出的分析结果。（自备标准品，检测样品做3次重复复管）HouseKeeperGeneGeneofInterest相对定量利用溶解曲线进行实验条件的优化（RG3000）熔解曲线分析Annealingat60℃Annealingat63℃标记方法Taqman定量分析，基因型分析Sybr-Green定量分析，熔解曲线分析，基因型分析(LCGreen)MolecularBeacon定量分析，熔解曲线分析，基因型分析FRET定量分析，熔解

7、曲线分析，基因型分析AmpliflourProbe，LUX定量分析基因型分析利用扩增信号的种类来分型——Taqman根据熔解曲线的不同来分型——FRET,MolecularBeaconLCGreen双Taqman探针法检测野生型和突变型在基因型分析中，可采用两种不同的Taqman探针（分别针对野生型和突变型)，即一个突变型探针以一种荧光素（Flr）标记，而野生型探针则用不同的荧光物（Tet）标记。如果只有一种