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时间:2020-04-13
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1、实验要求两人一组,独立实验每次实验完成均要求写实验报告及思考题不得旷课,特殊情况可补实验每次实验安排2人配制琼脂糖凝胶本课程考核前6个实验共计50分(实验报告和思考题)(本部分成绩也是《基因工程》的平时成绩)综合实验(包括设计报告)共计50分实验一质粒DNA的制备与质量鉴定一、实验目的学习并掌握基因工程操作技术中最常用的载体质粒DNA的提取方法。二、实验原理在碱性溶液中,双链DNA氢键断裂,DNA双螺旋结构遭破坏而发生变性,但由于质粒DNA分子量相对较小,且呈环状超螺旋结构,即使在高碱性pH条件下,两条互补链也不会完全分离,当加入中和缓冲液时,变性质
2、粒DNA又恢复到原来的构型;而线性的大分子量细菌染色体DNA则不能复性,与细胞碎片、蛋白质、SDS等形成不溶性复合物,通过离心沉淀,细胞碎片、染色体DNA及大部分蛋白质等可被除去,而质粒DNA及小分子量的RNA则留在上清液中,再用酚/氯仿处理,可去除残留蛋白质,混杂的RNA可用RNA酶(RNAase)消除。三、实验材料与主要试剂实验材料:含pEGFP质粒的大肠杆菌DH5α主要试剂:溶液I:50mM葡萄糖,10mMEDTA,25mMTris-HCl(pH8.0),用前加溶菌酶4mg/L溶液II:0.2mol/LNaOH溶液(内含1%SDS),现配现用溶
3、液III(pH4.8):60mL5mol/L醋酸钾,11.5mL冰醋酸,28.5mLH2O;饱和酚/氯仿/异戊醇(25:24:1)、酚/氯仿(1:1,V/V)TE缓冲液(pH8.0):10mMTris-HCl,1mMEDTA,含RNA酶(RNaseA):20µg/ml醋酸钠(pH5.2)、70%乙醇、无水乙醇四、实验步骤1)吸取1.4ml菌液至1.5ml离心管中。2)离心(8000r/min,1min),弃上清液(根据菌液浓度判断是否需要重复1~2次)。3)加入150µL溶液Ⅰ,用旋涡振荡器充分悬浮菌体。4)加入200µL溶液Ⅱ,加盖后温和颠倒5~6
4、次,直至呈透明状。此步骤在5分钟内完成。5)加入150µL预冷的溶液Ⅲ,加盖后反复颠倒混匀,直至出现白色絮状沉淀,冰浴5min。6)离心(14000r/min,5min),移取上清液于另一干净离心管。7)向上清液中加等体积的苯酚/氯仿/异戊醇(25:24:1),振荡混匀抽提,离心(14000r/min,5min),溶液将出现分层。8)移取上层水相溶液(约450~500µL)于另一干净离心管,加等体积氯仿,振荡混匀抽提,离心(14000r/min,5min),溶液将出现分层。9)移取上层水相溶液于另一干净离心管,加入1/10体积的醋酸钠(pH5.2)和
5、2倍体积无水乙醇混匀,冰浴30min。10)离心(14000r/min,10min,4℃),倒掉上清液。11)加0.5ml预冷的70%酒精振荡,洗DNA沉淀一次,离心5min,倒掉上清液。12)真空抽干或室温自然干燥.13)加20~30µLTE缓冲液使DNA完全溶解,室温放置10min,降解RNA杂质,少量用于琼脂糖凝胶质量检测,剩余质粒-20℃保存备用。14)1%琼脂糖凝胶配制:称取1g琼脂糖粉末,加入100ml0.5倍TBE溶液,加热熔化,稍降温后,加入5µL溴化乙锭(EB),混匀,制备凝胶板,冷却后备用。15)每位同学各取5µL质粒DNA加入1
6、µL6×loadingbuffer,混匀,进行点样。16)电泳条件:120v,40min;电泳完成后,胶块通过凝胶成像系统检测,观察实验结果,并拍照记录。五、实验结果观察并分析电泳图片六、实验报告按实验内容完成实验报告及教材上的思考题。实验二质粒DNA的片断化及分离一、实验目的1、学习利用紫外分光光度法鉴定DNA质量2、采用Ⅱ型限制性核酸内切酶切割质粒DNA,并通过琼脂糖凝胶电泳分析酶切效果。二、实验原理DNA吸收光谱峰在260nm处,测定此波长下DNA溶液的OD值,当OD260=1时,双链DNA含量约为50µg/mL,据此可用紫外分光光度计测定溶液
7、中DNA含量。由于蛋白质吸收峰在280nm处,在测定DNA含量时,通过计算OD260/OD280值,可了解所测DNA的纯度,如该值为1.8~2.0时,DNA纯度高。已知Ⅱ型限制性核酸内切酶能专一识别碱基序列,并在该处切断双链DNA,形成一定长度和序列的DNA片段。酶切反应需Mg2+等金属离子以及一定浓度的盐离子,不同内切酶对盐离子有不同的要求,如盐离子浓度使用不当或甘油含量过高(﹥5%),会使酶的识别位点发生改变,产生星活性。绝大多数酶的反应温度37℃。三、实验材料:实验一提取的质粒DNA四、试剂限制性核酸内切酶XbaI;缓冲液10×MBuffer;
8、0.1%BSA;0.5×TBEBuffer;1%琼脂糖五、实验步骤1、DNA的测定空白测定(Blank):吸
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