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时间:2020-04-11
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1、蛋白质含量的测定——考马斯亮蓝染色法(Bradford法)实验人员:董佳琦潘立一、实验目的掌握Brodford法测量蛋白质浓度的原理和操作技术。二、实验原理考马斯亮蓝法是根据蛋白质与染料相结合的原理设计的,这是一种迅速,可靠的通过染色法测定溶液中蛋白质浓度的方法。尽管相对于其他方法来说,此法的干扰物较少,但由于每种蛋白质与该染料的结合能力不同,故标准品的选择非常重要,选择尽可能与待测蛋白一致的样品做标准,能最大限度的提高该方法的准确性。考马斯亮蓝G250有红蓝两种不同颜色的形式。在一定浓度的乙醇及酸性条件下,可配成淡红色的溶液,当与
2、蛋白质结合后,产生蓝色化合物,反应迅速而稳定。经研究证明,染料主要是蛋白质中碱性氨基酸和芳香族氨基酸残基相结合。反应化合物在595nm处有最大光吸收,化合物颜色的深浅在一定范围内与蛋白质浓度成正比,,因此可通过测定595nm处的光吸收值来计算蛋白的含量。考马斯亮蓝染色法的优点:(1)灵敏度高(比Lowry法灵敏4倍),测其最低蛋白质测量可达1mg。(2)测定快速,简洁。只需加入一种试剂,完成一个样品的测定,只需5min左右。(3)此方法干扰物少如干扰Lowry法的K+、Na+、Mg+例子,Tris缓冲液、蔗糖、甘油、EDTA等均不干
3、扰此法。考马斯亮蓝染色法的缺点:1.由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford法用于不同蛋白质时有较大的偏差。在制作曲线时通常选用G-球蛋白为标准蛋白质,以减少这方面的偏差。2.仍然有一些物质干扰此法的测定。主要干扰物质有:去污剂TritonX-100,SDS和0.1mol/L的NaOH3.标准曲线也有轻微的非线性,因而不能用Beer定律进行计算,而只能用标准曲线来测定蛋白质的浓度。三、试剂和器材1、试剂(1)考马斯亮蓝G250燃料试剂考马斯亮蓝G-250100mg溶于50ml95%乙醇中,加入120ml
4、85%磷酸,用蒸馏水稀释至1000ml。(2)标准蛋白质溶液称取BSA50mg,以0.015mol/L的PBS溶液50mL溶解,配制成1.0mg/mL的标准蛋白质溶液,4℃存放。2.器材(1)取样器及其架子(2)试管及试管架(3)漩涡混合器(4)微量进样器(5)VIS-7220可见分光光度计四、操作方法1、标准曲线的制作(1)取7支试管,1号管为空白,2-7号用微量进样器分别加1.0mg/mL的牛血清白蛋白溶液10,20,40,60,80,100μL,各管用0.015mol/LPBS缓冲液补充剂100μL,详见下表,混匀待用管号标准
5、蛋白质(μL)缓冲液(μL)总体积(μL)10100100210901003208010044060100560401006802010071000100另取3支清洁试管,编号8、9、10,用微量进样器按下表操作,将待测蛋白配成系列浓度。2、将待测蛋白配成合适浓度管号待测蛋白质(μL)缓冲液(μL)总体积(μL)稀释倍数820801005940601002.51060401001.67各试管充分混匀后,用取样器分别加入5.0mL考马斯亮蓝G250试剂,每加完一管,立即混合。3、加入G250试剂各管室温静置2-5min后,在分光光度计
6、上测定595nm处的光吸收值A595,空白对照为1号试管,标准和待测蛋白同时比色。注意:不可使用石英比色皿,只能用玻璃比色皿,使用后立即用少量95%乙醇润洗,洗去颜色。4、比色以标准蛋白质浓度(mg/mL)为横坐标,吸光度A595为纵坐标作图,得到一条标准曲线。5、制作标准曲线在标准曲线上,根据测出的待测样品的A595值,查处试管中蛋白质浓度,再按照计算公式:待测蛋白质的浓度(mg/mL)=查出的浓度×稀释倍数计算出待测蛋白浓度,如样品稀释合理且操作得当,待测蛋白的三个数值应具有同一性,取其平均值作为待测蛋白浓度,如某一吸收值落在标
7、准曲线线性范围外,舍弃该点。6、根据标准曲线计算待测蛋白浓度五.计算六.注意事项1.蛋白质反应液应该储存在棕色瓶内,可长期使用,但如果变为绿色,则需要重配2.比色皿只能用自来水冲洗,蒸馏水、95%乙醇润洗,不可用试管刷或者其他物品直接洗刷。3.玻璃比色皿1套只有4只,可以同时使用,严禁与其他比色皿混用。4.分光光度计的吸光值在0.2-0.7时准确度最高,低于0.1而超出0.1时误差较大,如未知样品的读数不在此范围内,应将样品做适当稀释或浓缩。七.补充蛋白质含量测定方法比较蛋白质含量测定法,是生物化学研究中最常用、最基本的分析方法之一
8、。目前常用的有四种古老的经典方法,即定氮法,双缩尿法(Biuret法)、Folin-酚试剂法(Lowry法)和紫外吸收法。另外还有一种近十年才普遍使用起来的新的测定法,即考马斯亮蓝法(Bradford法)。其中Bradford法和Lo
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