Bradford法.doc

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1、原理：这一方法基于考马斯亮蓝G-250有红蓝两种不同的形式。在一定浓度的乙醇及酸性条件下，可配成淡红色的溶液，当与蛋白质结合后，产生蓝色化合物，反应迅速而稳定。反应化合物在465-595nm处有最大的光吸收值，化合物颜色的深浅与蛋白浓度的高低成正比关系，因此可检测595nm的光吸收值的大小计算蛋白的含量。溶液：1）Bradford储存液100ml95%乙醇200ml88%磷酸350mgServaG蓝室温下长期保持稳定。2）Bradford工作液425ml双蒸水15ml95%乙醇30ml88%磷酸

2、30mlBradford储存液用滤纸过滤，保存于室温棕色瓶中，可保存数周，但在使用前需要过滤。3）配制1mg/ml牛血清蛋白（BSA）做标准曲线：取样品即可测量。注意事项：1、样品制备，样品制备是做好2-d的关键，样品中离子浓度不能过大，最好用新鲜的样品提取蛋白质，如果不确定蛋白提取情况，建议先跑sds-page检验。2、上样量的问题，ipg胶条是13厘米的上样量在50ng-80ng之间，上样量不合适，丰度低的将会被丰度高的所遮盖。3、ipg胶条ph的选择，根据不同样品选择不同pH值。4、针对不

3、同的蛋白质，分离胶的浓度需调整。一、实验原理双缩脲法（biuret法）和folin—酚试剂法（lowry法）的明显缺点和许多限制，促使科学家们去寻找更好的蛋白质溶液测定的方法。1976年由bradford建立的考马斯亮兰法（bradford法），是根据蛋白质与染料相结合的原理设计的。这种蛋白质测定法具有超过其他几种方法的突出优点，因而正在得到广泛的应用。这一方法是目前灵敏度最高的蛋白质测定法。考马斯亮兰g-250染料，在酸性溶液中与蛋白质结合，使染料的最大吸收峰的位置（lmax），由465nm变

4、为595nm，溶液的颜色也由棕黑色变为兰色。经研究认为，染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸（特别是精氨酸）和芳香族氨基酸残基相结合。在595nm下测定的吸光度值A595，与蛋白质浓度成正比。bradford法的突出优点是：1.灵敏度高，据估计比lowry法约高四倍，其最低蛋白质检测量可达1mg。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大，蛋白质－染料复合物有更高的消光系数，因而光吸收值随蛋白质浓度的变化比lowry法要大的多。2.测定快速、简便，只需加一种试剂。完成一个样品的测定，只需要5分钟左

5、右。由于染料与蛋白质结合的过程，大约只要2分钟即可完成，其颜色可以在1小时内保持稳定，且在5分钟至20分钟之间，颜色的稳定性最好。因而完全不用像lowry法那样费时和严格地控制时间。3.干扰物质少。如干扰lowry法的K+、Na+、Mg2+离子、tris缓冲液、糖和蔗糖、甘油、巯基乙醇、edta等均不干扰此测定法。此法的缺点是：1.由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此bradford法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差，在制作标准曲线时通常选用g—球蛋白为标准蛋白质，以减少这方面

6、的偏差。2.仍有一些物质干扰此法的测定，主要的干扰物质有：去污剂、tritonx-100、十二烷基硫酸钠（sds）和0.1n的naoh。（如同0.1n的酸干扰lowary法一样）。3.标准曲线也有轻微的非线性，因而不能用beer定律进行计算，而只能用标准曲线来测定未知蛋白质的浓度。二、试剂与器材1.试剂：①标准蛋白质溶液，用g—球蛋白或牛血清蛋白(bsa)，配制成1.0mg/ml和0.1mg/ml的标准蛋白质溶液。②考马斯亮兰g—250染料试剂：称100mg考马斯亮兰g—250，溶于50ml95

7、%的乙醇后，再加入120ml85%的磷酸，用水稀释至1升。2.器材：①可见光分光光度计②旋涡混合器③试管16支三、操作方法1.标准方法①取16支试管，1支作空白，3支留作未知样品，其余试管分为两组按表中顺序，分别加入样品、水和试剂，即用1.0mg/ml的标准蛋白质溶液给各试管分别加入：0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml，然后用无离子水补充到0.1ml。最后各试管中分别加入5.0ml考马斯亮兰g—250试剂，每加完一管，立即在旋涡混合器上混合（注意不要太剧烈，以免产生

8、大量气泡而难于消除）。未知样品的加样量见下表中的第8、9、10管。②加完试剂2-5分钟后，即可开始用比色皿，在分光光度计上测定各样品在595nm处的光吸收值A595，空白对照为第1号试管，即0.1mlH2O加5.0mlg—250试剂。注意：不可使用石英比色皿（因不易洗去染色），可用塑料或玻璃比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇荡洗，以洗去染色。塑料比色皿决不可用乙醇或丙酮长时间浸泡。考马斯亮兰法实验表管号12345678910标准蛋白质(1.0mg/ml)00.010.020.040.060.0