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1、中华芦荟组培快繁试验探究摘要以中华芦荟茎段为材料，筛选出了MS为较适宜于中华芦荟试管苗生长的培养基，结果表明：初代培养基中，6-BA浓度以2.0〜3.Omg/L.蔗糖浓度以3%为宜；继代培养基以MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.5mg/L为最佳,芽增殖系数为4.50；生根培养中，不同浓度NAA激素对试管苗生根率和生根数都有极显著的影响，生根培养基以MS+NAA0.3mg/L为最佳，生根率达100%,平均生根数6.3条；试管苗炼苗7〜10d后移栽到蘑菇土：沙土=3:1的基质上，移栽成活率可达97%以上。关键词中华芦荟；茎段；组培快繁中
2、图分类号S682.33文献标识码A文章编号1007-5739(2013)19-0188-01芦荟为百合科多年生肉质草本植物，中华芦荟(AloeveraL.var.chinensi)是库拉索芦荟的优良变种。近年来,芦荟产业发展迅速，芦荟产品深受人们的喜爱，其应用前景广泛。但因芦荟雌雄花开不同步，种子育苗困难[1],而目前的繁殖方法以芽分生为主，不能大规模快速繁殖，影响了芦荟产业的发展。因此，笔者在前人研究的基础上，以中华芦荟茎段为材料，探索促进茎段丛生芽分化及瓶苗壮苗生根的方法，为大规模快速生产芦荟组培苗提供理论和实践依据[2-6]o1材料
3、与方法1.1试验材料供试中华芦荟幼苗材料，由厦门远太景观规划设计工程有限公司苗圃基地提供。供试试剂为75%酒精、0.1%升汞、激素（6-BA）、生长素（NAA）、蔗糖、琼脂等。1.2试验方法［体的选取及消毒。取株高为15〜20cm的中华芦荟，剥去其外层叶片及根系，先用自来水将茎段冲洗干净，然后将其放置在超净工作台上用75%酒精浸泡30s,再用0.1%升汞灭菌10min,最后用无菌水将其冲洗4〜5次。消毒完毕，应将芦荟茎段接种于不同的诱导培养基上。1.2.2培养基及培养条件。以MS为基本培养基，附加不同浓度的激素（6-BA）、生长素（NAA
4、）,添加蔗糖3%、琼脂0.65%,pH值5.8,培养温度为26〜28°C,光照强度2000〜2500lx,光照时间10〜12h/do2结果与分析2.1不同诱导培养基对中华芦荟侧芽萌发的影响将中华芦荟茎块外植体接种到不同的诱导培养基上，发现其均在10d以后萌发，接种后20d开始调查不同诱导培养基对中华芦荟侧芽的萌芽率。从表1可以看出，不同诱导培养基处理之间存在显著差异，以MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.3mg/L生长快速、芽粗壮，萌芽率达100%,不加激素的MS培养基处理生长缓慢，且萌芽率仅90%。2.2不同激素配比对中华芦荟继代培
5、养的影响将2.1中诱导成功的芦荟芽接种至继代培养基中培养，10d左右即开始从腋芽处诱导出分化芽。重复此过程，可获得大量芦荟芽。从表2可以看出，MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.5mg/L的处理增殖效果最好，增殖系数达到4.50,增殖芽苗数达90株。以MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.5mg/L的处理增殖芽苗数最少，为53株，增殖系数为2.65o因此，应选用MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.5mg/L对中华芦荟进行继代培养。2.3不同激素配比对中华芦荟不定根诱导的影响将2.2中获得的2〜3cm长的增殖芽切成单株转入生根培养
6、基。10d左右开始长根，根的颜色为淡黄色[7-9],从调查结果表明，以添加NAA0.3mg/L的表现较好，20d后,平均每株生根数为6.3根。而其他处理的都较差，说明生根培养基以1/2MS+NAA0.3mg/L为佳（表3）。2.4不同种植处理方法对幼苗成活的影响将已长出2〜5条根、株高5〜10cm的瓶苗洗去培养基,然后将洗净的小苗放在遮阳网下晾干，放置7〜10d后叶片颜色转为褐绿色即可假植，移栽前将培养基质用600倍的高镒酸钾淋湿、覆盖消毒7do移栽时，将小苗移栽到已灭菌的土壤中，调查结果表明，盖膜保湿处理因湿度在85%以上,7d后幼苗从
7、头部开始腐烂，15d后统计结果，成活率约82%,而处理除个别较弱小死苗外，成活率在97%以上(表4)。3结论与讨论茎段是诱导不定芽的最佳选择，在取材中认为取自较小的幼苗由于茎径太小，所以不易成功，选取20〜30cm的植株较适合，且每个茎块应在1〜2cm。试验结果表明，增殖培养基MS+6-BA3.0mg/L+NAAO.5mg/L是较佳的配方，增殖系数达4.50,但经继代多次后是否产生变异影响苗的生长有待进一步观察。提高组培苗的假植成活率，是组培苗异养到自养的关键一步。本试验中通过湿度的调节使幼苗成活率达到97%以上，说明对土壤干湿度调控是影
8、响芦荟组培苗假植成活的关键技术之一，但对芦荟苗期栽培管理方面对土壤基质、肥水、温度、光照的影响等有待进一步研究。4参考文献[1]杨国会•芦荟茎段的组织培养[J].农业与技术，2000,20(3
