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时间:2019-11-22
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1、XX大学毕业论文人食管鳞癌细胞的体外培养及生物学性状2014年6月25日人食管鳞癌细胞的体外培养及生物学性状作者:徐驯宇,孙志刚,黄盛东,方超英,林兴,曾志勇【摘要】口的研究人食管鳞癌细胞的体外培养及生物学性状。方法自原发食管鳞癌组织中获取标本,应用消化培养法培养岀可连续传代的肿瘤细胞,对培养的细胞进行形态学观察、免疫组织化学鉴定;MTT法测定细胞数,绘制生长曲线和计算细胞倍增时间,平板克隆实验以测定平板克隆形成率、流式细胞仪测定细胞周期分布。结果30例患者的肿瘤组织冇6例成功体外培养出肿瘤细胞,培养出的细胞符合鳞癌特性;细胞生长具有平台期,细胞倍增吋间(33・12±6」0)h,平板克
2、隆形成率(15・73±4.46)%;(77.57±6.57)%细胞处于细胞增殖的GO、G1期,少数细胞处丁•活跃的增殖期。结论人食管鳞癌细胞成功获得了体外培养;肿瘤细胞的增殖能力不同,只有少数细胞增殖活跃。【关键词】食管肿瘤;癌,鳞状细胞;肿瘤细胞,培养的;肿瘤干细胞目前,在白血病、多发性骨髓瘤以及肺癌、卵巢癌、乳腺癌、神经母细胞瘤等肿瘤的研究提示,肿瘤细胞的增殖能力不同,大部分肿瘤细胞已经失去了生长潜能,只冇一小部分细胞具有无限增殖和在体内外形成肿瘤的能力,这些细胞被称作肿瘤干细胞,是肿瘤组织屮具有自我更新、分化及增殖能力的肿瘤细胞,虽只占肿瘤细胞的一小部分,却是肿瘤起源、发展与转移
3、的根源[17]o肿瘤干细胞如能成功分离鉴定,靶向肿瘤干细胞的治疗策略可能是癌症治疗的一个方向。本系列研究在成功建立能够体外长期培养的食管上皮细胞系的基础上,旨在研究食管癌中是否存在着肿瘤干细胞[8]。本实验首先对人食管鳞癌细胞进行体外原代培养,并对培养的可连续传代的食管鳞癌细胞系进行牛物学特性研究。1材料和方法1.1人食管鳞癌细胞的体外培养1.1.1标木来源于木院及上海长海医院30例行食管癌手术(术前无放、化疗史)患者的肿瘤组织,均经病理确诊为鳞状细胞癌。手术切除肿瘤后,立即切取小块癌变组织置于含双抗(青霉素100U/mL,链霉素100gg/mL)PBS液无菌培养基的小瓶内,去除坏死组
4、织,剪碎至1〜2mm3。1.1.2将标本置于培养瓶屮,加入10%胶原齣(美国Amresco公司)的含血清DMEM培养基(美国Gibco公司)5mL,在37°C、体积分数为0.05的CO2的培养箱内消化过夜;次H1000r/min离心;分瓶接种,加入含血清的培养基,37°C、体积分数为0.05的CO2中培养,每48〜72h换液1次。待有细胞贴壁生长后,用记号笔在倒置显微镜下对成纤维细胞生长的地方作标记,用自制的细胞擦刮除成纤维细胞,反复进行,直到上皮样肿瘤细胞纯化为止。细胞牛t至80%汇合时,0.25%胰酶消化,继续传下一代。第3代起细胞生长逐渐稳定,一般3〜5d传代1次(1:2〜3稀释
5、)。1.2人食管鳞癌细胞的生长曲线取20代以上的对数生长期的细胞,稀释为2x104mL-1,以每孔200yL接种于96孔培养板屮,每间隔24h进行噬哇兰(MTT)法测定细胞数。毎孔加入MTT20此,培养4h,加入二甲基亚砚(DMSO)150nL显色,酶联免疫检测仪于570nm处测定各孔光密度值(D),绘制细胞生长曲线。计算细胞的倍增时间(Patterson公式):Td=Tlg2/lg(Nt/NO)Td:倍增时间(h);T:细胞数由NO增至Nt所用时间;N0:起始细胞数,Nt:第t天的细胞数。1.3平板克隆形成率取第20代以上的80%汇合细胞,制成单细胞悬液,加入6孔板内,毎孔接种400
6、个细胞,培养13d后,纯甲醇固定30min,Giemsa染色15min,晾干。计算细胞数50的克隆数。克隆形成率=克隆数/接种细胞数xlOO%1.4细胞周期20代以上90%以上汇合细胞,用体积分数为70%的乙醇溶液4°C固定lh,加入RNA酶,孵育30min,加入碘化丙喘染液染色30min,FACScan流式细胞仪测定荧光强度,CELLQUEST软件采集数据,ModfitLT2.0软件进行DNA含量分析,确定细胞周期分布。1.5细胞爬片免疫组织化学把部分细胞培养在小盖玻片上,3〜4d后取出盖玻片,纯丙酮固定,一抗为CK7鼠单克隆抗体(细胞角蛋口抗体,美国Sigma公司),二抗为羊抗小鼠
7、/兔IgG(美国SantaCruz公司),DAB显色。2结果30例肿瘤组织有6例成功体外培养出肿瘤细胞,其临床资料见表1。表1体外成功培养出可传代肿瘤细胞的6例患者的临床资料2」形态学观察第2天大部分细胞己贴壁,上皮细胞聚集成小团块状,较规则、圆形、透亮。原代培养第3〜4天上皮细胞团块周边开始出现细胞爬出,并逐渐形成上皮晕,第12〜18犬上皮细胞可铺满瓶底的70%〜80%(图1)。细胞主要呈三角形、多角形或短梭形,大小不等,细胞质丰富,胞核圆形
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