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时间:2019-08-03
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1、优化的前处理方法可以提高NSCLC患者的ctDNA的KRAS突变检出率介绍利用ctDNA进行非侵入性的突变检测具有很大的应用前景。这可以为无法获得组织标本的患者提供更多的治疗选择。材料和方法我们分析了45例NSCLC患者的血液和组织的匹配情况。我们研究了DNA提取相关因素对KRAS突变检测的影响:样本收集管,孵育时间,离心步骤,血浆提取量和DNA提取试剂盒。结果2小时的孵育时间,两次血浆离心分离(2000xg)可以降低总DNA的污染。同72小时后采用EDTA抗凝管收集的全血相比,cfDNA专用采血管收集的全血污染概率更低、KRAS突变检出率更高。血浆收集量和不同类型
2、的DNA提取试剂盒均可影响DNA的提取量。结论本研究显示较好的前处理步骤可以获得高质量的用于NSCLC患者突变检测的ctDNA。开发标准的用于KRAS突变检测的标本ctDNA提取方法可以降低前处理步骤对突变检出率的影响。利用cfDNA专用采血管进行快速的标本处理是有益的。结果不同的血浆处理步骤提取的DNA质量为了验证是否存在不同的血浆处理方法会导致不同的gDNA污染水平,我们收集了20例NSCLC患者的血浆,并按照不同的方法进行处理(图1A和图2)。采用EDTA抗凝管和较长的孵育时间可以显著提高DNA的提取量(p<0.01),平均值±SD:EDTA抗凝管2h孵育(2
3、.46±1.60ng/μL)对比EDTA抗凝管72h孵育(15.12±16.44ng/μL)(图2A)。采用cfDNA专用采血管72h孵育提取出的DNA量(3.31±1.82ng/μL)比cfDNA专用采血管2h孵育提取出的DNA量(2.39±1.42ng/μL)具有显著性的提高(p<0.01)(图2B)。当血浆处理时间超过2h时,采用任意一种采血管提取出的总DNA并没有显著性差异(2C)。采用cfDNA专用采血管血浆孵育72h提取出的DNA量远低于采用EDTA采血管同等处理条件下提取出的DNA量(p<0.01)(图2D)。进一步分析每个亚组单次离心和两次离心对患者
4、标本DNA提取量的影响(图2E和图2F)。血浆2h两次离心提取出的DNA量并没有比血浆1h单次离心提取出的DNA量有显著性的提高(图2E)。但是,当样本放置72h后,双次离心(19.35±24.3ng/μL)较单次离心(35.47±32.1ng/μL)相降低了提取DNA的平均量。5个样本中的4个样本提取出的DNA有所降低,但这种差异并不显著(P=0.058)(图2F)。总体分析,这些结果表明优化的血浆处理步骤可以影响DNA的提取水平。图2.血浆处理方法对比。收集20例NSCLC患者的全血,用不同的采血管、孵育时间和离心次数进行处理。将其中一个亚组患者(N=5)全血的
5、单次离心和两次离心步骤的进行对比。用ABI的TaqMan探针检测提取DNA的量。A:EDTA采血管收集的全血,孵育2h或者72h。B:cfDNA专用采血管收集的全血,孵育2h或者72h。C:EDTA采血管或cfDNA专用采血管收集的全血,孵育2h。D:EDTA采血管或cfDNA专用采血管收集的全血,孵育72h。E:EDTA采血管收集的血液孵育2h,单次或双次离心进行处理。F:EDTA采血管收集的血液孵育72h,单次或双次离心进行处理。每例患者的处理结果均列在图中。采用t检验进行统计分析;**p<0.01。不同血浆处理步骤的KRAS突变检测不同的血浆处理步骤也被用于研
6、究20例患者的KRAS突变检测(图1A)。从任何血浆前处理步骤中获取的DNA均用于KRAS突变检测,并同凯杰的therascreenKRAS突变检测试剂盒检出的FFPE组织标本阳性的患者进行对比(n=10/20;数据未显示)。在该队列研究中,cfDNA专用采血管血浆孵育2h的标本KRAS突变一致率为50%(n=5)而同等条件下血浆孵育72h的阳性一致率为40%(n=4)。然而,同非最优处理方法相比,突变的阳性检出率有所下降。同一患者标本,EDTA采血管血浆孵育2h处理后的标本阳性检出率为40%(n=4),同等条件下血浆孵育72h处理后的标本阳性检出率为20%(n=2
7、)(表1)。10例血浆标本的CT值、KRASDNA总扩增数(KRAS控制组)和ΔCT值见表S1。根据凯杰的therascreenKRAS突变检测试剂盒说明书判定KRAS突变状态,突变标本的ΔCT值临界值为6.6-8。由于携带有KRAS突变的ctDNA可检测的标本数量较少,无法进行显著性分析。表1.NSCLC患者的血浆KRAS突变检测总的可扩增的KRASDNA(KRAS控制组)在所有DNA标本中具有相似的趋势(图2)(表S1)。非最优条件下提取出的DNA的CT值较低,这表明此条件下提取出的DNA受到了较大的污染;平均CT±SD分别为:EDTA采血管孵育2h(29.
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