实验基因组DNA的制备

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1、实验十、基因组DNA的提取一、概述染色体DNA通常用于构建基因组文库和Southern杂交，同时在目前广受人们关注的生物基因组学研究中是最重要的研究目标。1、基因组文库的构建：当用于构建基因组文库时，所得的染色体DNA的片段长度应尽可能的长（至少应大于需克隆片段的4倍）。当用Cosmid构建文库时，片段长度应大于200kb;用噬菌体构建文库时应大于80kb。但在制备过程中，有机溶剂的抽提、震荡、反复抽提和乙醇沉淀等步骤都会造成DNA断裂。我们应尽可能采用温和的方法和手段。2、Southern杂交：用

2、于Southern杂交的染色体DNA片段长度要求可适当降低。3、PCRAFLPRFLP等：DNA片段长度要求可适当降低。一、概述不同生物（植物、动物、微生物）的基因组DNA的提取方法有所不同；同种生物的不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同，分离方法也有差异。在提取某种特殊组织的DNA时，必须参照文献和经验建立的相应提取方法，以获得可用的DNA大分子。二、植物基因组DNA提取(水稻和其它禾本科植物)1、试剂A.提取缓冲液：100mmol/LTris·Cl（pH8.0）、20mm

3、ol/LEDTA、500mmol/LNaCl、1.5%SDS。B.氯仿/戊醇/乙醇溶液:80：4：16/氯仿：戊醇：乙醇C.异丙醇D.TE:10mol/LTrisCl(pH8.0)，1mmol/LEDTA(pH8.0).高压蒸气灭菌15分钟,储存于4℃冰箱。E.RNaseA：10mg/mlF.3mol/LNaAC2、实验步骤在50ml离心管中加入20ml提取缓冲液，60℃水浴预热。水稻幼苗或叶子5-10g，剪碎，在研钵中加液氮磨成粉状后立即倒入预热的离心管中，剧烈摇动混匀，60℃水浴保温30-60分

4、钟（时间长，DNA产量高），不时摇动。加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液，颠倒混匀（需带手套，防止损伤皮肤），室温下静置5-10分钟，使水相和有机相分层（必要时可重新混匀）。室温下5000rpm离心5分钟。仔细移取上清液至另一50ml离心管，加入一倍体积异丙醇，混匀，室温下放置片刻即出现絮状DNA沉淀。在1.5mleppendorf管中加入1mlTE。用勾状玻璃棒捞出DNA絮团，在干净吸水纸上吸干，转入含TE的离心管中，DNA很快溶解于TE。如DNA不形成絮状沉淀，则可用5000rpm离心5分钟，再将

5、沉淀移入TE管中。这样收集的沉淀，往往难溶解于TE，可在60℃水浴放置15分钟以上，以帮助溶解。2、实验步骤(续）H.将DNA溶液3000rpm离心5分钟，上清液倒入干净的5ml离心管。I.加入5ulRNaseA（10ug/ul），37℃10分钟，除去RNA（RNA对DNA的操作分析一般无影响，可省略该步骤）。J.加入1/10体积的3mol/LNaAC及2x体积的冰乙醇，混匀，-20℃放置20分钟左右，使DNA形成絮状沉淀。K.用玻棒捞出DNA沉淀，70%乙醇漂洗，再在干净吸水纸上吸干。L.将DNA

6、重新溶解于1mlTE中，-20℃贮存。M.取2ulDNA样品在0.7%Agarose胶上电泳，检测DNA的分子大小。同时可取15ul稀释20倍，测定OD260/OD280，检测DNA含量及质量。3、注意事项A、不同的植物材料提取的方法有差异，主要在提取缓冲液的成分上，如李、苹果的植物的染色体DNA提取所用的提取缓冲液为：18.6g葡萄糖、6.9g二乙基二硫代碳酸钠（Sarkosyl）、6.0gPVP、240ul巯基乙醇、加水至300ml。B、DNA纯度：DNA的OD260/OD280一般为1.8左右

7、。OD260/OD2801.8：说明较纯；OD260/OD2801.8：说明可能有RNA污染；OD260/OD2801.8：说明可能有蛋白质污染。C、DNA浓度：当OD260为1时，dsDNA含量为50ug/ml,ssDNA或RNA含量为40g/ml；单链寡核苷酸为20ug/ml.[dsDNA]（µg/ml）=50×OD260×稀释倍数V-gene动/植物组织细胞基因组DNA小量纯化试剂盒1、基本原理：该试剂盒采用公司自身研制的相分离技术和DNA制备膜选择性吸附DNA的原理从1-10mg新鲜动

8、物组织或2-20mg新鲜植物组织中提取至多20ug纯净的染色体DNA.2、实验步骤样品收集：100mg新鲜植物叶片，剪刀成小块，放入研钵中，加入液氮，使植物组织冷冻完全后，快速、用力研磨至粉末状。研磨时应间断加入液氮防止组织融化。研磨充分后将研钵放入65℃水浴至样品粉末刚开始融化。加入700ulbufferG-L溶液和1.2ulRNaseA1贮存液，用力研磨30秒。转移650ul研磨好的匀浆至2ml离心管中，如体积不到650ul,加bufferG-L溶液至650ul,