《实验二蔗糖酶》PPT课件

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1、生物技术综合实验2010.3实验二、酵母蔗糖酶的提取和酶活测定实验目的学习提取酵母蔗糖酶和测定酶活力的方法;学习提取生物活性大分子的方法。实验材料材料:活性干酵母粉、石英砂;试剂:95%冰乙醇、DNS液、PBS(pH7.2)、5%蔗糖溶液、1NNaOH溶液;仪器:水浴锅、高速冷冻离心机、722型分光光度计。实验原理蔗糖酶的提取过程和酶活的测定方法;蛋白质等生物活性大分子的提取方法。提取工艺和酶活测定蔗糖酶蔗糖酶的耐热温度为50度,45度以下可保持酶活不变;在pH3.0~8.0范围内均可保持较高的酶活;蔗糖酶的活性中心有巯基,因此在提取时应防止其被氧化,或者加入还原剂(如

2、Vc)保持酶活力;酵母细胞存在两种蔗糖酶,一种在细胞壁中,一种在细胞质内,前者活力较高,分子量较大(约270KDa),后者活力较低,分子量约为135KDa,两种酶的底物专一性和动力学性质十分相似,因此,本实验未区分内酶与外酶。提取工艺1.破碎酵母细胞的方法:蔗糖酶分子量较大,一般采用研磨法彻底破碎细胞使其释放出来,但应注意研磨过程中保持低温防止酶失活;或者采用自溶法(适当的酸度和温度下利用酵母菌自身的酶系破坏细胞壁),此方法较为温和,但是时间较长,需加入少量防腐剂,防止过程中外界细菌污染;原则:低温,处理时间短,防止酶失活。2.选择性热变性:根据蔗糖酶的耐热性质,将热不

3、稳定性杂蛋白变性除去,而蔗糖酶保持活性仍在上清液中;该法简便易行。原则:1、选择合适的温度和加热时间,防止目的物变性,2、溶液的蛋白质浓度要合适,防止蔗糖酶与杂蛋白共沉淀。3.有机溶剂沉淀法:根据蔗糖酶的分子量和亲水性,在溶液中加入一定量的无水乙醇溶液,利用其脱水作用,破坏了蛋白质分子表面的水化膜,使蔗糖酶聚集沉淀下来,而与其它杂质分开。一般采用分级沉淀法摸索目的物沉淀的条件。原则:1、注意在低温下操作,故无水乙醇要预冷;2、边加乙醇边搅拌溶液,防止局部乙醇过浓,导致酶变性失活;3、离心后应迅速将上清倒出,沉淀物用缓冲液溶解,避免酶与有机溶剂长时间接触,防止其变性。测定

4、酶活的原理蔗糖酶可作用于β-1,2糖苷键,将蔗糖水解为D-葡萄糖和D-果糖;Cu2+、Zn2+、Fe2+是其激活剂,Mn2+是其抑制剂。葡萄糖和果糖具有还原性,在偏碱性条件下,可与3,5-二硝基水杨酸共热后生成棕红色物质,在一定浓度范围内,还原糖的量和反应液的颜色强度成正比例关系。蔗糖酶的活力通过其水解生成的还原糖量来反映。提取酶注意事项了解目的物的分子量、酸碱稳定性、热稳定性,选择合适的提取条件;提取过程中采用缓冲液系统溶解酶,并可添加一些保护剂(如还原剂、金属螯合剂等);提取过程一般保持低温、避免剧烈搅拌、强酸、强碱等变性的因素;一般先选择分辨率低处理量大的方法(如

5、萃取、沉淀、吸附)浓缩酶,再采用分辨率高的方法(如离子交换层析、亲和层析、超滤)精制;通过酶活测定,调节提取条件。实验步骤反复冻融法破碎酵母细胞称取0.5g活性干酵母粉,0.2g石英砂,置于预冷的研钵中,研磨至粉状,加入10mLPBS(pH7.2),混合均匀,研磨5min,-20度冷冻(液面结一层薄冰即可),再研磨5min;离心获得粗酶液吸取3mL酵母细胞破碎液于离心管中(两组同学配平),5000rpm15min,保留上清液;——粗酶液分离纯化获得纯酶液吸取剩余的7mL酵母细胞破碎液于烧杯中,45度水浴15min,缓慢搅拌(防止产生泡沫,蛋白质变性),迅速冷却,5000

6、rpm15min,保留上清液;——选择性热变性除去杂蛋白将上清液置于烧杯中,加入等体积预冷的无水乙醇(乙醇终浓度约50%),边加边缓慢搅拌,-20度静置15~20min,5000rpm15min,保留沉淀物;——有机溶剂沉淀法获得蔗糖酶吸取7mLPBS(pH7.2)于沉淀物中,轻轻搅拌促溶;——纯酶液酶活测定蔗糖酶将底物水解为还原糖试剂(均40度预热)粗酶液组纯酶液组测定组1对照组1测定组2对照组2酶液(mL)1.01.01.01.01NNaOH液(mL)-0.5-0.55%蔗糖液(mL)2.02.02.02.040度水浴10min,自来水冷却1NNaOH液(mL)0.

7、5-0.5-2、DNS法测定还原糖量试剂粗酶液组纯酶液组测定组1对照组1测定组2对照组2水解液(mL)1.01.01.01.0蒸馏水(mL)1.01.01.01.0DNS液(mL)1.01.01.01.0沸水浴5min,自来水冷却,稀释至12mL,以对照组调零,记录测定组OD540nm。实验结果计算酶活力将吸光值代入葡萄糖标准曲线,得到1.0mL水解液中还原糖量(m)酶活力(U/mL)=m(mg)×3.5(水解液总体积)/1.0(吸取酶液体积)蔗糖酶活力定义:在一定实验条件下,在规定时间内释放1mg还原糖的酶量为一活力单位。葡萄糖量标准曲

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