感受态细胞的制备和转化

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1、感受态细胞的制备和转化2013/3/26第一节概述在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的mob基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌,需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态以摄取外源DNA。转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞,使之获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株,

2、即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体(Rˉ,Mˉ),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2,RbCl(KCl)等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞(Compenentcells)。进入受体细胞的DNA分子通过复制,表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。将经过转化后的细胞在筛选培养基中培养,即可筛选出转化子(Transformant,即带有异源DNA分子的受体细胞)。目前常用的感受

3、态细胞制备方法有CaCl2和RbCl(KCl)法,RbCl(KCl)法制备的感受态细胞转化效率较高,但CaCl2法简便易行,且其转化效率完全可以满足一般实验的要求,制备出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油于-70℃保存(半年),因此CaCl2法为使用更广泛。为了提高转化效率,实验中要考虑以下几个重要因素:细胞生长状态和密度:不要用经过多次转接或储于4℃的培养菌,最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好,可通过监测培养液的OD

4、600来控制。DH5α菌株的OD600为0.5时,细胞密度在5×107个/ml左右(不同的菌株情况有所不同),这时比较合适。密度过高或不足均会影响转化效率。质粒的质量和浓度:用于转化的质粒DNA应主要是超螺旋态DNA(cccDNA)。转化效率与外源DNA的浓度在一定范围内成正比,但当加入的外源DNA的量过多或体积过大时,转化效率就会降低。1ng的cccDNA即可使50μl的感受态细胞达到饱和。一般情况下,DNA溶液的体积不应超过感受态细胞体积的5%。试剂的质量:所用的试剂,如CaCl2等均需是最高纯度的(GR.或

5、AR.),并用超纯水配制,最好分装保存于干燥的冷暗处。防止杂菌和杂DNA的污染:整个操作过程均应在无菌条件下进行,所用器皿,如离心管、tip头等最好是新的,并经高压灭菌处理,所有的试剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、DNA酶或杂DNA所污染,否则均会影响转化效率或杂DNA的转入,为以后的筛选、鉴定带来不必要的麻烦。第二节感受态细胞的制备一、材料:大肠杆菌E.coliDH5α,100ml三角瓶,1.5ml离心管(又称eppendorf管),离心管架,1000ul、200ul枪头,大量冰块,二、设备:微量移液器(20

6、0μl,1000μl),高压蒸汽消毒器(灭菌锅),恒温摇床、冷冻离心机,超净工作台,紫外光度计,双蒸水器,冰箱等。三、试剂准备1、LB液体培养基:称取蛋白胨(Tryptone)10g,酵母提取物(Yeastextract)5g,NaCl10g,溶于800ml蒸馏水中,用NaOH调pH至7.0,加水至总体积1升,高压下蒸气灭菌15分钟。2、LB固体培养基:液体培养基中每升加15g琼脂粉,高压灭菌。3、高压灭菌的0.1MCaCl2:称取1.11gCaCl2(无水,分析纯),溶于50ml重蒸水中,定容至100ml,高压

7、灭菌。4、含15%甘油的0.1MCaCl2:称取1.11CaCl2(无水,分析纯),溶于50ml重蒸水中,加入15ml甘油,定容至100ml,高压灭菌。感受态细胞的制备和转化2013/3/26四、操作步骤(CaCl2法)(1)(已预先准备好)从新活化的E.coliDH5α菌平板上挑取单个DH5α大菌落(超净工作台操作),接种于3~5mlLB液体培养中,37℃振荡(210-240r/min)培养12h左右,直至对数生长期。将该菌悬液以1:100~1:50转接于20mlLB液体培养基中,37℃振荡扩大培养,当培养液开

8、始出现混浊后,每隔20~30min测一次OD600nm,至OD600nm≤0.5时停止培养(培养2~3h至OD600=0.5左右);(2)在无菌条件下将细菌转移到一个无菌、一次性使用的、用冰预冷的50ml聚丙烯管(Falcon2070)中,在冰上放置10min,使培养物冷却至0℃。切记:下述所有步骤均需无菌操作(在超净工作台完成。)。于4℃以4000转/分离心10分钟,以

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