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时间:2019-01-09
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1、珍稀濒危植物宝华玉兰ISSR―PCR反应体系建立及优化 摘要:为建立和优化宝华玉兰(MagnoliazeniiCheng)ISSR-PCR反应体系,采用正交试验和单因子试验方法对影响PCR扩增体系中的Mg2+、dNTPs、DNA模板、引物和Taq聚合酶一定浓度的用量5个因子进行分析比较。结果显示,宝华玉兰ISSR-PCR25μL反应体系中的5个因子最佳水平分别为DNA模板(20ng/μL)3.5μL,引物(10μmol/L)1.25μL,Taq聚合酶(5U/μL)0.2μL,Mg2+(25mmol/L)2.0μL
2、,dNTPs(2.5mmol/L)0.8μL。宝华玉兰ISSR-PCR反应的最优体系建立,为进一步利用ISSR对其进行分子标记辅助育种、分子身份证构建和遗传多样性分析等后续研究奠定了基础。 关键词:宝华玉兰(MagnoliazeniiCheng);ISSR-PCR反应体系;种质资源保护 中图分类号:Q949.747.1+2文献标识码:A文章编号:0439-8114(2016)16-4206-04 DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2016.16.034 宝华玉兰(Magno
3、liazenii4Cheng)是木兰科(Magnoliaceae)珍贵园林观赏植物,在每年的3~4月开花,其芳香艳丽、姿态优美,有极高的观赏价值。但其仅产自江苏省句容县宝华山,数量较少,已被列为国家二级重点保护植物。由于宝华玉兰产地单一,对于环境的要求特别严格,所以人工栽培并成功的事例很少,同时由于林下灌木层不断被破坏,没有更新苗木,现已处于濒危状态[1]。面对如此严峻的形势,开展对宝华玉兰的遗传多样性分析研究、制定具有针对性的种质资源保护策略刻不容缓。简单序列重复区间扩增多态性(Inter-simpleseque
4、ncerepeats,ISSR)是由加拿大蒙特利尔大学Zietkiewicz等于1994年创建的一种分子标记技术[2],ISSR分子标记技术兼具SSR、RAPD、RFLP、AFLP等分子标记的优点,与其他技术相比,ISSR不需要预先获知序列信息而使成本降低,且多态性更丰富;并且重复性高、稳定性好,同时具备简便、易操作等特点;相比之下,ISSR更快捷、成本较低、DNA用量小、安全性较高[3]。由于上述优点,ISSR在植物种质资源研究尤其是种质资源的收集和鉴定、遗传多样性分析和亲缘关系鉴别及基因定位等方面得到了广泛的应
5、用[4-9]。 目前对宝华玉兰的研究,仅在形态学、生物生态学特性、生存现状、文献考证、群落学分析等方面有过初步研究和探索,对该物种在分子水平上的遗传多样性分析至今尚未见报道。试验通过正交试验和单因子试验,分析DNA模板、Taq聚合酶、引物、Mg2+和dNTPs5个因子用量对宝华玉兰ISSR-PCR反应的影响,建立宝华玉兰最优ISSR-PCR反应体系,以期为利用ISSR标记对其进行分子标记辅助育种、分子身份证构建和遗传多样性分析等后续研究奠定基础。 1材料与方法 1.1材料 试验所需的宝华玉兰活体材料采自江苏
6、省句容县宝华山。采取植物叶片后用硅胶快速干燥,妥善保存后送回南京森林警察学院实验室。4 1.2方法 1.2.1宝华玉兰DNA提取取硅胶干燥的植物叶片0.1g,用研钵研磨粉碎,采用改良的十六烷基三乙基溴化铵(CTAB)法抽提基因组DNA[10]。DNA的浓度和质量采用紫外分光光度法和1%琼脂糖凝胶电泳法检测。 1.2.2宝华玉兰ISSR-PCR反应引物筛选引物参照加拿大哥伦比亚大学(UBC)网站公布的第九套ISSR引物序列进行合成。从100个ISSR引物中随机选择12条引物803、816、826、834、842
7、、848、857、863、875、886、890、897进行目标引物的筛选。初反应体系为25μL,其中Taq聚合酶(5U/μL)0.2μL,Mg2+(25mmol/L)2μL,DNA模板(20ng/μL)2μL,dNTPs(2.5mmol/L)2μL,引物(10μmol/L)1μL,MilliQ水15.3μL。扩增程序为:95℃预变性10min;94℃变性30s,58℃退火30s,72℃延伸2min,共36个循环;72℃延伸10min。采用1%琼脂糖凝胶电泳进行扩增产物检测。 1.2.3宝华玉兰ISSR-PCR反
8、应体系建立对宝华玉兰ISSR-PCR反应的5因素(Taq酶、Mg2+、DNA模板、dNTPs、引物)4水平(浓度)设置正交试验L16(45),共16个处理,每处理重复2次,建立宝华玉兰ISSR-PCR反应体系,具体信息见表1和表2。 1.2.4宝华玉兰ISSR-PCR反应单因子试验设计对正交试验建立的ISSR-PCR反应体系进行单因子试验(Mg2+、DNA
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