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时间:2018-12-25
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1、【转】WesternBlot实战指南:从电泳到定量-1样品制备:变性条件——SDSLB直接裂解:用常温或者高温预热过(预热更有利于阻止蛋白水解或者磷酸酶去磷酸化,但容易遗忘,LB久煮某些性质会改变)的1*SDSLB(或者略高1.5*)直接加到细胞或者组织上并煮样。通常6孔板细胞80%以上密度,需200ul,其他按平板面积比类推。通常条件下,SDSLB都是过量的(因此不一定要严格参考SDSLB稀释比);如果SDSLB不够,样品核酸、蛋白浓度过高时,煮样后会发现tip吸不上来,非常粘、一砣一砣的,很容易堵住tip。这时候常规做法有
2、两种,1.再煮5min。常规煮样时间3-5min,样品过浓时就煮10min;2.如果10min煮样后,仍然吸不起来,才适当增加SDSLB,继续煮;也可以对样品进行超声。煮样时间若过长,蛋白会凝固,此时以失去继续WB的意义,请丢弃(判断标准:出现明显的蛋白沉淀和水分层)此方法的缺点,SDSLB煮过的样品如果用来做IP,需要特殊方法,因此,这种制备方法制备的样品有使用局限。非变性裂解法(不讨论诸如核抽提、亚细胞器分离等等了,其实类似)裂解细胞请尽量冰上操作,减缓酶解作用。俺前bossnature文章上的裂解液配方是:20mMTri
3、s/HCl,pH7.6,100mMNaCl,20mMKCl,1.5mMMgCl2,0.5%NP-40andproteaseinhibitors(20μg/mlleupeptin,10μg/mlpepstatinAand10μg/mlaprotinin)(此裂解液可用于抽提核蛋白),其中蛋白酶抑制剂很复杂也很贵,其实用0.5mMPMSF替代这三种就好了;如果还要做磷酸化蛋白,加1mMNa3VO4(现加现用),10mMNaF,1mMNa3VO4,50mMbeta-GP。此方法的优点:NaCl浓度略低于生理状态,保证裂解细胞的方式较
4、为温和,便于随后的IP等试验。其他Na盐浓度的细胞裂解液也很常见,诸如0.15M(生理盐浓度)、0.3M、0.6M(高盐系列,裂解细胞时染色体会析出,细胞碎片和沉淀非常粘稠)及0.8-1.2M;0.3M及以下适合IP试验,0.6M及以上适合纯化蛋白,尤其相互作用较强的复合体,要得到纯化的一些复合体的组成蛋白一般采用极端的高盐裂解细胞。用于核蛋白的裂解的原因是0.5%NP-40,用于破坏核膜结构;可用到1%,但此时染色体会析出,沉淀粘稠。组织块裂解:组织块较大用匀浆的方法最合适,现在有不少转头很小的匀浆器。当组织超微量的时候,比
5、如50mg新鲜癌组织,我采用的方法是1.低温(剪)搅碎,成肉糜状。2.锡箔纸包裹好,放入少量液氮,快速敲击(控制力量,尽量避免弄破锡箔纸),进一步破碎;反复多次。3.用上述细胞裂解液回收。分泌型蛋白富集:用无血清培养基培养细胞,收集上清液用于WB检测;如果含量过低,需要用TCA沉淀富集。理论上,从普通培养基中收集分泌蛋白,此时对细胞生长条件的影响最小,是最佳的实验条件;但是这存在隐忧。因为含血清的培养基中含有非常丰富的BSA(牛血清白蛋白)之类的蛋白质,除非你进一步分离纯化,否则直接用这种样品去WB会有非常大的麻烦,尤其当你的
6、蛋白在60-46kDa之间的时候;用“任何”抗体去检测这一区间的蛋白,会有一片非常强的信号。因为此区间蛋白(主要是BSA)浓度过于富集,会非特异性粘附“任意”抗体,从而最终被识别。同理,采用SDSLB裂解细胞制备样品前,通常要用PBS洗涤,其目的之一是去除培养基中的BSA。采用无血清培养基收集细胞上清除了改变细胞的生理状态外(可能激活未知信号途径,诸如AKT等),还会出现的问题是:1.即使采用了无血清收集上清,仍然有大量杂蛋白,但相对好很多。2.选用了上清,由于蛋白浓度太稀,通常要采用TCA沉淀富集,再重新溶解。a.TCA沉淀
7、对半定量操作要求非常高,因为很容易沉淀不充分或者离心操作丢失,尤其在离心过程,离心管的摆放非常讲究,要180度翻转离心两次。b。重新溶解时,由于蛋白需要在一定的盐离子条件下才能重新溶解,你要摸索充分溶解的条件,相对麻烦。实际上,如果你不是非常强调蛋白的分泌有什么生理功能,一般不建议检测上清,尤其半定量的WB实验检测不同样品间的差异。这里面有实验操作细节的麻烦——经验之谈,我曾经参与的cancercell文章所研究的蛋白就是分泌型蛋白,但90%的数据是celllysis;偶尔用到上清,也只是作为富集纯化该蛋白的原料,为进一步分析
8、做准备。样品制备完,应立即低温保存(-20度短期(几天);-80度长期;例外,IP用样品应直接进行IP,避免冻融破坏蛋白质间弱的相互作用)。SDSLB煮沸过的样品冻融会存在另一个问题,SDS沉淀;SDS4度就会沉淀,何况-80度。上样前应加热充分溶解,否则从加样口向下拖带(S
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