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时间:2018-11-29
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1、针对人caspase8基因的siRNA的载体的构建及其表达【摘要】目的构建针对人caspase8基因mRNA的siRNA表达载体,并观察其对转染细胞中caspase8的抑制作用。方法化学合成针对caspase8发夹状的RNA寡核苷酸,将其退火形成双链,连接入经HindⅢ和BglⅡ双酶切后的pSUPER真核表达载体。对重组质粒进行酶切分析和测序鉴定。通过脂质体介导,把重组质粒瞬时转染入HeLa细胞,RTPCR测其对mRNA和蛋白表达的干涉效果。结果成功地构建了针对人caspase8基因的RNA干涉真核表达载体p
2、SUPERC1和pSUPERC2,并在人HeLa细胞中有效发挥了对caspase8基因的干涉作用,而且pSUPERC1对于caspase8基因的抑制作用要优于pSUPERC2。结论成功地构建了针对人caspase8基因的siRNA载体,转染HeLa细胞后可抑制caspase8基因的表达。【关键词】caspase8;RNA干涉;真核表达载体;HeLa细胞Abstract:ObjectiveToconstructtheeukaryoticexpressionvectorforRNAinterferencing
3、humancaspase8geneanddetectitsinterferenceeffectHeLacellline.MethodsTentsedigestionanalysisandDNAsequencingThenHeLacellsedigestionanalysisandDNAsequencingshoentsega公司产品。逆转录试剂盒、TrizolRNA分离试剂、Lipofectamine2000为Invitrogen公司产品;RPMI1640、G418均购自GIBCO公司;caspase8鼠抗人Ig
4、G为abcam公司产品;Cy3标记的山羊抗鼠二抗购自博士德公司。1.2针对caspase8基因的寡核苷酸的设计和制备根据Genbank中caspase8基因的序列,在编码区内选择2段19nt(分别位于基因序列中188~207和1168~1187)为不同的干涉区域,分别进行BLAST比较,以避免与其它基因同源。根据RNA干涉载体pSUPER的要求,每段各设计一对长64个碱基的序列,由北京奥科生物公司合成。序列如下:5′GATCCGGAGCTGCTCTTCCGAATTTTCAAGAGAAATTCGGAAGAGCAGC
5、TCCTTTTTTGGAAA3′,互补链为5′AGCTTTTCCAAAAAAGGAGCTGCTCTTCCGAATTTCTCTTGAAAATTCGGAAGAGCAGCTCCG3′;5′GATCCCGAGATATATCCCGGATGATTCAAGAGATCATCCGGGATATATCTCGTTTTTTGGAAA3′,互补链为5′AGCTTTTCCAAAAAACGAGATATATCCCGGATGATCTCTTGAATCATCCGGGATATATCTCGG3′,划线部分为siRNA引物序列,两端包含HindⅢ和B
6、glⅡ的识别位点。1.3构建siRNA的pSUPER表达载体用HindⅢ和BglⅡ双酶切pSUPER载体,37℃、3h、1%琼脂糖凝胶电泳后,回收载体大片段(上海华舜公司试剂盒);将合成的互补链分别退火,形成带有黏端的双链,用T4连接酶分别连接入pSUPER载体中HindⅢ和BglⅡ的酶切位点之间。转化大肠杆菌DH5,挑选Amp抗性克隆,培养并制备质粒,用EcoRI、HindⅢ双酶切(因BglⅡ酶切位点已不存在)鉴定。酶切鉴定正确的克隆送北京奥科生物公司测序,将测序正确的克隆分别命名为pSUPERC1和pSUPER
7、C2。1.4脂质体介导的HeLa细胞的稳定转染在6孔板内按每孔1×106细胞接种细胞,第2天2个重组质粒及pSUPER载体质粒分别与pcDNA3载体质粒按10∶1的浓度共转染HeLa细胞,操作步骤按Lipofectamine2000说明书进行。转染48h后换为含400mlG418的选择培养基继续培养,10~15d后获得3种质粒,分别与pCDNA3质粒共转染后的HeLa细胞稳定克隆。1.5caspase8基因表达的RTPCR检测从mRNA水平检测caspase8的表达。分别收集3种共转染后的HeLa细胞和未转染的H
8、eLa细胞各5×106,采用TrizolRNA分离试剂提取细胞的RNA。取5μg总RNA,加入1μg的oligo(dT)1218(0.5μg/μl),按照SuperScriptⅡRT逆转录试剂盒产品说明书操作,合成cDNA第1链。PCR引物由primer5.0软件设计(基因序列中144~1192,片段长958bp,包含了2个干
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