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时间:2018-11-24
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1、TRAIL与DDP联合诱导急性淋巴细胞白血病Jurkat细胞凋亡的实验研究论文毕林涛高长斌宿晓云卢振霞【摘要】目的探讨肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TRAIL)与顺铂(DDP)联合应用对急性淋巴细胞白血病细胞的抑制作用,为白血病的临床治疗提供新思路。方法构建重组载体pACCMVTRAIL,用脂质体法进行细胞转染,MTT法检测单独或联用TRAIL及DDP处理的各组肿瘤细胞的增殖变化,FCM技术检测细胞凋亡变化。结果DDP组、TRAIL转染组及联合用药组细胞增殖抑制率均高于空白对照组(均P<0.05),且联合用药组高于单独用药组(P<0.05);FCM示凋亡率也
2、明显增高。结论TRAIL和DDP联用可抑制急性淋巴细胞白血病细胞增殖,具有协调作用。【关键词】肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体;顺铂;急性淋巴细胞白血病;凋亡肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(tumornecrosisfactorrelatedapoptosisinducingligand,TRAIL)属于Ⅱ型跨膜蛋白质.freela公司;人T淋巴细胞白血病Jurkat细胞株由实验室自行保存并培养;重组质粒pACCMVTRAIL由本实验室自行构建并保存,已将TRAIL基因克隆至CMV启动子之后。1.2实验方法1.2.1Jurkat细胞培养及转染人T淋巴细胞白血病
3、细胞株Jurkat系本实验室常规培养,生长于含10%胎牛血清的RPMI1640完全培养液中,37℃、5%CO2培养箱中生长。取对数生长期细胞,离心后用无抗生素的培养基稀释,以2×106细胞/ml浓度接种到培养板中,用Lipofectamine2000进行转染,96孔板中每孔加入Lipofectamine20000.5μl,质粒0.2μg;6孔板每孔加入Lipofectamine200010μl,质粒4μg。具体操作按试剂说明书进行。转染4h后离心换液去除脂质体,继续培养24h。1.2.2化疗药物亚细胞毒剂量浓度的测定取对数生长期细胞,以2×106细胞/ml浓度
4、接种至96孔培养板中,每孔200μl。加入不同浓度DDP,终浓度分别为100、50、25、12.5、6.25、3.125μg/ml,空白对照组加入等体积培养基,各组设3复孔,加药24h后进行MTT检测。每孔加入5g/LMTT20μl,37℃孵育4h,洗净孔中液体,加入200μlDMSO,待MTT结晶充分溶解后检测各孔在490nm处的光吸收值。选择抑制率约为10%的药物浓度为亚细胞毒剂量浓度。细胞增殖抑制率=(对照组OD值-实验组OD值)/对照组OD值×100%1.2.3TRAIL、DDP对细胞增殖抑制作用的检测分别设空白对照组、空质粒转染组、单独DDP化疗组、
5、单独TRAIL转染组、TRAIL联合DDP化疗组。如前述取对数生长期细胞,接种至96孔培养板中,分组进行转染。转染4h后换液,DDP化疗组及TRAIL联合DDP化疗组加入亚细胞毒剂量浓度的DDP,空白对照组、空质粒转染组和单独TRAIL转染组加入等体积完全培养液,每组均设3个复孔。给药后24h以MTT法测细胞增殖抑制率。1.2.4流式细胞技术检测细胞凋亡率同上,对数生长期细胞接种于6孔培养板中,分组进行转染、加药。24h后1000r/min离心5min,收集各组细胞。各组细胞以冰冷PBS洗涤2次,加70%冰乙醇固定。PI染色后在流式细胞仪上进行细胞凋亡及细胞周
6、期检测。1.3统计学处理采用SPSS10.0统计软件,数据用x±s表示,进行配对设计资料t检验。2结果2.1Jurkat细胞转染由于表达载体中携有荧光蛋白,可在荧光显微镜下观察转染效率。本研究采用Lipofectamine2000,将质粒和脂质体混匀形成复合体,然后转染到细胞中,24h后荧光显微镜下观察到转染效率可达85%(图1)。2.2化疗药物亚细胞毒剂量浓度的测定用MTT法检测不同浓度DDP作用下细胞增殖情况变化,结果显示药物浓度为25、50和100μg/ml时,Jurkat细胞凋亡率均显著高于对照组(均P<0.05),但无明显量效依赖关系;药物浓度增大至
7、100μg/ml时,与50μg/ml剂量相比,诱导细胞凋亡率没有明显差别,表明DDP的作用有药物饱和效应。本实验中选择12.5μg/ml作为亚细胞毒剂量浓度进行给药。2.3细胞增殖抑制作用的检测用MTT法检测转染前后各组细胞增殖情况变化,结果显示应用DDP化疗组、TRAIL转染组及联合用药组细胞抑制率均高于空白对照组(P<0.05),且联合用药组高于单独用药组(P<0.05)(表1)。2.4细胞凋亡的检测流式细胞仪检测结果表明,pACCMVTRAIL转染处理组、应用DDP组及联合用药组凋亡发生率均高于空白对照组和空质粒转染组,且联合方案组的细胞凋亡显著高于单
8、药方案组。另外,检测结果显示应用DDP
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