兔肾vx2移植瘤模型的建立及其超声显像检测

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1、兔肾VX2移植瘤模型的建立及其超声显像检测作者：王子明，佘军军，程伟，李小鹏，李谦，车向明，韩水平，白卓亚【关键词】超声技术摘要：目的比较建立兔肾VX2移植瘤模型的不同方法的优劣。方法分别用瘤液穿刺法、瘤块液种植法、瘤块包埋法建立兔肾VX2癌模型。采用超声技术动态检测肿瘤体积及CDFI的变化，确定该模型最佳实验干预时段及其血流参数范围。比较各自的成瘤率；观测肾脏肿瘤的大小及其回声、瘤内血管生成以及血流阻抗等指标。结果瘤块包埋法可建立稳定的兔肾VX2移植瘤模型。B超可以实时、准确、方便的监测肿瘤体积及血流动力学变化。结论兔肾VX2移植瘤是一种造模方法简便且成瘤率高的肾癌动物模型

2、，采用超声技术能精确、无创的动态监测肿瘤体积变化及血流特征。　　关键词：兔；VX2肾癌；超声技术　　EstablishingrabbitVX2carcinomamodelandmonitoringit　ethodstoestablishtherabbitVX2carcinomamodel.MethodsUltrasoundtechniquethebestperiodsofexperimentontherabbitVX2carcinomamode.TherabbitVX2carcinomamodelorcellsfluidsandtumorblocktransplantingg

3、uidedbyBultrasound,tumorblocktransplantingbyoperationtoparethEirsuccessfulrate.Kidneysizeandotherindexsorblocktransplantingbyoperationostsuccessfultoestablishasteadymodel.ConclusionTherabbitVX2carcinomaisoneofthebiggestanimalmodelsforkidneycarcinomasexperimentalresearch;itissteadyandeasytob

4、emanipulated.　　KEYI1640培养液中，台盼蓝染色并做死、活细胞计数，将培养液调制成107/mL活细胞浓度。　　1.3动物模型建立将45只兔随机分为A、B、C三组，每组各15只。A组采用瘤细胞悬液接种法。兔清醒状态下B超引导穿刺右肾下级并注入瘤细胞液1mL。B组采用瘤块液穿刺种植法。先将上述瘤细胞液2mL分别注入兔双侧后腿皮下即成为荷瘤种兔，两周后肿瘤形成直径约2cm大小时完整切取，去除包膜及坏死组织，剪取肿瘤边缘生长旺盛部分置于Hanks液中。尽量剪碎约1mm，制成瘤细胞悬液。兔麻醉状态下B超引导16G穿刺针进入右肾下级，注入瘤细胞悬液0.3mL。C组采用瘤

5、块包埋法。兔麻醉后俯卧位固定，取右12肋缘下切口3-4cm，暴露右肾下级后用眼科镊穿刺1.5cm深隧洞。在冰块上将前述荷瘤组织剪为直径0.2-0.3cm的小块后植入。明胶海绵压迫止血，生物胶填塞。各组操作均于1.5h内完成。实验动物肌注青霉素40万单位，连续3d。实验期内无1例兔感染或死亡。　　1.4肿瘤的超声检查用AcusonSequoia512型超声仪，15L8Hz),分别于肿瘤种植后7、9、11、13、15、17、19、21、23、25d对实验兔进行多切面扫查，由两名高年资超声医师同时操作。观察肾脏及肾内肿瘤的大小、形态、回声特点,用所测数据计算肿瘤体积(V=0.5a×

6、b2，a和b分别是肿瘤最大直径和与其垂直的最小横径)和肿瘤生长率(tumorgroenofrabbitrenalVX2carcinomamodel　　图2兔肾VX2癌肿瘤细胞（略）　　Fig.2CellsofrabbitrenalVX2carcinomamodel(HE×400)　　2.2肿瘤生长特征变化三组实验兔不同时间肿瘤体积及其环比增长速度见表1。瘤块包埋组(C组)全部成瘤并且生长稳定，肿瘤形态规则，在植瘤后11-21d，各监测时间体积增长无显著性差异(P>0.05)。病检发现当肿瘤体积增至15-20cm3时，肿瘤中央出现液化坏死，周围局部浸润及肝、肺、肾门淋巴结

7、广泛转移。所以实验干预适宜于植瘤后2-3周内进行。　　2.3超声检测肿瘤的体积变化各组实验兔均于B超检查后即刻处死1只，并实际测量肿瘤大小后计算体积。B超测量体积与肿瘤实测体积(表2)经配对t检验无显著性差异(P>0.05)。表明B超可以方便、快速、无创、准确的应用于肿瘤动态监测，筛检合格的实验动物　　2.4瘤体内部及癌周CDFI血流信号的检测不同体积兔肾VX2癌瘤体内血流动力学变化见表3。根据CDFI将瘤体及其周边血流分为星点状、短条状、树枝状、环状四种[2]。兔肾VX2癌为富血供肿瘤，癌灶周边