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时间:2018-11-20
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1、重组信号分子GRF的PH结构域抑制蛋白激酶C活性论文.freelology(PH)结构域与谷胱甘肽转移酶(GST)融合蛋白的可溶性,并进一步检测该重组蛋白与蛋白激酶C(PKC)的结合及对PKC活性的影响.方法将表达GRF的PH结构域与GST融合蛋白的菌体经超声裂解,上清中的融合蛋白用琼脂糖珠锚定纯化.Toinvestigateassociationofguanine-nu-cleotide-releasingfactorforRas(GRF)PHdomainandpro-teinkinaseC(PK
2、C)andtoexamineeffectofGRFPHdo-mainonactivityofproteinkinaseC.METHODSGRFPHdomain-GSTfusionproteinail.jishaopinghotmail.teinployedtoconfirmthebindingofthePHdomainined.RESULTSAssociationofPKCainaindoainbindstoPKCandinhibitsitskinaseactivityinvitro.0引言我们以前
3、克隆表达了GRF(guanine-nucleotide-releasingfactorforRas)的PH结构域[1],现进一步研究其与PKC间的相互调节关系.GRF属小G蛋白家族,大鼠GRF由1244个氨基酸构成,其中包括两个PH结构域,分别位于22~129位和452~580位氨基酸[2].Ras蛋白是多种信号转导途径的核心.许多受体信号经过一系列的细胞内转导,在小G蛋白家族的介导下使GTP与Ras蛋白结合并激活Ras,从而启动Ras-Raf-MAPK信号系统[3].当用Ras抗体或将Ras突变可
4、明显阻断这些受体所介导的功能.在这一过程中,GTP与Ras蛋白结合可由GRF催化[2].另一方面,GRF能刺激GDP与Ras的解离,促使GTP与Ras的结合.将GRF和Ras共表达于COS7细胞,可检测到GTP结合形式Ras的聚集[4].目前,有关GRF与PKC之间相互作用我们所知甚少.对于MAPK信号转导途径的许多信号是经由Ras向下传递的,已知GRF能催化GDP-Ras转变成GTP-Ras形式从而激活Ras,这其中除了GRF外,SOS-1对Ras也具有激活作用.在许多信号转导途径中处于重要位置的
5、PKC,其介导的信号转导通路可看作是不同于MAPK信号途径的另一信号转导通路,但研究却发现PKC也对Ras有激活作用[5].与GRF及SOS-1相比,PKC对Ras的激活方式以及激活后的效应是不同的[6].有关PKC对GRF的激活机制尚有待进一步研究.1材料和方法1.1材料中分子质量蛋白质分子质量参照物购自华美公司,蛋白酶抑制剂购自Promega公司,其他试剂盒的来源在随后注明.PGEX-4T-1载体和DH5α菌株为本教研室保存.1.2表达蛋白的可溶性鉴定及纯化以超声波破碎已表达GRFPH结构域-R
6、ST融合蛋白的菌体,4℃,2×1min.离心(12000g,4℃20min).分别取50μL上清(留上清备用)和全部沉淀(沉淀约占总体积的1%~2%),加入2×上样缓冲液50μL,按常规方法进行SDS-PAGE.将上清,以谷胱甘肽偶联的琼脂糖珠纯化所表达的融合蛋白,多次离心漂洗后取沉淀.通过SDS-PAGE,调整各组蛋白质的浓度(以电泳后蛋白质条带的粗细为参照,用宿主菌上清作稀释液),使之接近一致,以避免非特异结合造成的差异.1.3Jurkat细胞的培养及裂解将人T细胞白血病细胞系Jurkat接种于
7、RPMI1640培养基(含100mLL-1的胎牛血清),于37℃50mLL-1CO2条件下培养.收集细胞(约2×107),加入2mLNP-40细胞裂解液(10gL-1NP-40,20mmolL-1Tris-HCl,pH8.0,150mmolL-1NaCl,0.2gL-1NaN3,0.1mmolL-1CaCl2,用前加入0.17gL-1aprotinin,1.0mmolL-1PMSF),震荡1min,离心(14000g,4℃,10min),取上清于4℃备用.1.4APK信号转导系统的许多信号是必须经由
8、Ras向下传递,Ras在这一系统中处于重要地位.已知GRF能催化GDP-Ras转变成GTP-Ras形式从而激活Ras[8],这一过程,除了GRF外,SOS-1和Vav等对Ras也具有激活作用,这些分子均参与了对Ras-Raf-MAPK信号转导系统的调节.在许多信号转导途径中处于重要位置的PKC[9,10],是一类胞质内丝/苏氨酸蛋白激酶,广泛参与细胞的多种生命过程,包括生长、分化、细胞周期调节、肿瘤发生、细胞凋亡、T细胞的免疫过程以及学习和记忆等.其介导的信号转导通路
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