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时间:2018-11-18
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1、表没食子儿茶素没食子酸酯诱导人胃癌BGC823细胞凋亡论文邹少娜,文小玲,刘晓萍,陈晓艳,王强,罗招阳【摘要】[目的]观察表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)诱导人胃癌BGC823细胞凋亡的生物学效应及分子机制。[方法]通过MTT法检测EGCG对BGC823细胞生长的影响;用形态学观察、流式细胞术和DNA琼脂糖凝胶电泳研究EGCG诱导BGC823细胞凋亡。I-1640培养液,在37℃,含5%CO2的饱合湿度的培养箱内培养传代。1.2药品与试剂EGCG:Sigma公司产品,纯度95%。小牛血清:杭州四季青生物工程公司产品,MTT为Amresco公司产品;
2、细胞凋亡DNALadder检测试剂盒为北京博大泰克生物基因技术有限责任公司产品;Caspase-3、NF-κB(p65)、Bcl-2和Bax抗体为SantaCruz公司产品,辣根过氧化物酶标记羊抗鼠IgG和辣根过氧化物酶标记羊抗兔IgG为武汉博士德生物有限公司产品。1.3MTT比色法测定取对数生长期细胞,接种于96孔平底培养板,每孔180μl(含0.9×104细胞)。培养6h后加入处理因素并设本底对照组、空白对照,使EGCG的终浓度为20μg/ml、40μg/ml、60μg/ml、80μg/ml、100μg/ml每组设4个平行孔,继续培养48h。然后每
3、孔加入MTT20μl(5mg/ml),4h后即终止培养,弃上清液,每孔加入200μlDMSO,振荡摇匀,置酶联免疫检测仪在570nm波长处测量吸光度(A)值。按以下公式计算细胞增殖抑制率:抑制率(IR%)=(1-试验组A值/对照组A值)×100%。1.4细胞形态学观察按常规方法制备细胞爬片,用HE染色,光镜下观察细胞形态学改变。1.5琼脂糖凝胶电泳按DNALadder检测试剂盒说明抽提DNA,取样品5μl于2%琼脂糖凝胶电泳(8V/cm,2h),紫外凝胶成像系统下观察并照相。1.6流式细胞术分析0.25%胰蛋白酶消化,收集培养细胞,PBS洗2次,每次4
4、℃800r/min离心5min,去上清液后加入4℃PBS0.5ml,充分混匀悬浮细胞,计数制成约1×106细胞/ml×1ml的单细胞悬液。用4℃预冷的70%乙醇2ml固定细胞(4℃,48h~72h)充分混匀。固定细胞用PBS洗2次,加RNA酶50μl(浓度为0.5mg/ml),37℃水浴30min,加碘化丙啶(PI)50μl,浓度为1mg/ml,振荡混匀,避光置冰箱30min,300目尼龙网滤过,上机检测,计数10000个细胞,进行细胞周期和DNA含量分析。1.7Tris-ClpH7.5,150mMNaCl,10ml/LNP40,1mg/mlSDS,1
5、0g/L脱氧胆酸钠,1mMDTT,1mMPMSF,25μg/ml亮抑素,25μg/ml胰蛋白抑制剂)4℃裂解30min,超声碎裂30s,13000r/min,离心去细胞碎片,留含有全蛋白的上清液。用BCAassayreagent测定蛋白浓度,50μg蛋白与加样缓冲液混合,100℃变性5min,在10%不连续SDS-PAGE胶中电泳分离,电转移至PVDF膜,膜与一抗孵育12h,二抗孵育1h,用ECL发光法显色、曝光、显影、定影、水洗。胶片采用薄层扫描仪测定印迹区带的光密度值。1.8统计学处理采用SPSS10.0统计学软件,实验结果(x±s)表示,两组间比
6、较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析(one-l作用BGC823细胞48h,其抑制率分别为29.04%±2.4%、48.44%±3.7%、62.51%±3.1%、72.97%±2.9%、79.29%±5.4%。EGCG作用BGC823细胞48h的IC50为39.9±2.6μg/ml(见图1)。2.2EGCG对BGC823细胞凋亡的影响2.2.1细胞凋亡形态学观察在光镜下,HE染色,未处理的BGC823细胞胞浆染成红色,胞核染成蓝色,细胞胞浆少,核浆比例大。经40μg/mlEGCG处理48h后,BGC823细胞呈现典型凋亡细胞形态,细胞变圆
7、、皱缩,核染色质固缩积聚至核膜周边,核深染,见图2。2.2.2PI染色FCM分析流式细胞术检测结果显示:未处理的BGC823细胞48h凋亡率为1.8%±0.2%,用20、40、80μg/mlEGCG作用48h,凋亡率分别为9.8%±1.9%、15.7%±1.3%、32.1%±2.4%,凋亡率随浓度的增高而增高(P<0.05)。2.2.3DNA琼脂糖凝胶电泳EGCG作用BGC823细胞后,可诱导BGC823细胞产生凋亡细胞的典型DNA梯形条带。以80μg/mlEGCG作用BGC823细胞24、48和72h来观察不同时间EGCG诱导DNA断裂。当EGCG作
8、用BGC823细胞24h时,未见DNA梯形条带,时间延长至48h、72h时,DNA梯形条带清晰
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