建立大鼠体外循环中肺保护液灌注模型

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1、建立大鼠体外循环中肺保护液灌注模型【关键词】肺灌注摘要：目的为研究大鼠体外循环(CPB)中肺损伤机制与肺保护方法,建立大鼠CPB肺保护液灌注模型。方法用大鼠离体肺作为氧合器，建立大鼠CPB，肺动脉置管行低温保护液肺灌注。结果32例模型均建立成功。结论离体大鼠肺能够作为氧合器用于CPB研究,大鼠CPB中肺动脉灌注肺保护液在方法上是可行的。　　关键词：动物模型;肺灌注;体外循环;大鼠　　AModelofProtectiveSolutionInfusionIntoPulmonaryArtery　DuringCardiopulmo

2、naryBypassinRat　　　Abstract:OBJECTIVECardiopulmonarybypass(CPB)isknomatoryresponseandreperfusioninjuryinassociationodelade.METHODSIsolatedratlungsexperimentalratsentalratsbypump.TheexperimentalratpulmonaryarteryodelsechanicaloxygenatorintheratCPBmodel.　　Keyodel；car

3、diopulmonarybypass；lunginjury；rat　　体外循环(CPB)后肺部并发症依然是困扰心外科的一大难题，是小儿心脏手术后主要死亡原因之一。CPB中的肺损伤主要由体外循环中血液与非生理性管道界面接触引发的全身炎症反应以及肺的缺血再灌注损伤造成［1］。研究肺损伤发生机制、减轻炎症反应与缺血再灌注损伤成为肺保护研究的热点，在CPB时灌注低温肺保护液是术中实施肺保护的主要手段之一［2］。为研究CPB中肺保护液灌注及相关药物与手段的肺保护效果，以离体肺作为CPB氧合器,建立了32例大鼠体外循环及肺保护液灌注模

4、型，效果良好。　　1材料与方法　　1.1实验动物　　SD大鼠，雌雄不限，体重300~350g。　　1.2实验仪器　　stockertdoubleheadrollerpump，江湾Ⅰ型人工微型呼吸器，HX-10555恒温循环器，相应测压装置。　　1.3实验方法　　将实验用大鼠，经腹腔注射3％戊巴比妥（25mg/kg）麻醉，经股静脉注射肝素盐水（1000μg/kg）使之肝素化，切开胸部皮肤至颈部，游离出气管，行气管插管接呼吸器(吸入氧浓度100％，潮气量：10ml/kg，呼吸频率：50~60次／min)。仔细开胸避免损伤肺脏，

5、游离右侧颈总动脉和上腔静脉，置双道结扎线，分别置入22号和20号穿刺针分接动静脉体外循环管道，结扎线固定，并结扎血管远端。管道经恒温循环器保持温度在38℃。游离肺动脉，置10号丝线以备阻断。经右室流出道置24号穿刺针入肺动脉，右室表面置管处用微型血管夹固定并避免出血。　　取另一只大鼠，麻醉肝素化后，气管插管接呼吸器(呼吸指标同上)，开胸后剪断右侧颈总动脉放血，加入少量胶体用作预充液预充管道，将心肺一同取下，剪去心尖部及左室侧壁组织，经右室流出道插管入肺动脉，插管接CPB静脉引流管，剪开右心耳以利肺静脉回流，固定于实验架，置

6、入连接恒温循环器的血液回收器，回流肺静脉血用转流泵经动脉管道动脉穿刺针泵入实验动物主动脉。如图1。　　经主动脉穿刺针抽取实验前血液标本后开始CPB，灌注流量5ml/min，阻断肺动脉，停实验动物呼吸器，经肺动脉插管灌注肺保护液（温度：4℃，灌注量：15ml/kg，灌注压：20cmH2O），30min后开放肺动脉并打开呼吸器，CPB灌注流量逐渐减半，追加半量肝素，继续转流60min后，测取气道压及相应指标，经左心耳抽取血液标本后停止体外循环，留取肺组织标本，实验结束。　　2实验结果　　转流中测定血气分析，氧分压、氧饱和度、红

7、细胞压积、气道压均在正常范围。本实验中有一只大鼠因注射麻醉药刺破大血管致死；两例因恒温循环器温度失控致水温过高，转流10min后出现溶血引起肺严重水肿；两例因上腔静脉插管失败或不理想转而取血取肺用作预充和氧合器，另取大鼠用作实验鼠。其余均顺利成功。只要血管结扎可靠，术中无明显渗血；肺动脉阻断后，因失去前负荷心跳减慢，松阻断后心跳逐渐恢复正常。　　3讨论　　动物CPB实验模型多以较大动物为主，大鼠CPB模型较少报道［3］；外文