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时间:2018-11-16
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1、Celecoxib通过抑制Survivin表达促进肺癌A549细胞凋亡【摘要】 [目的]研究Celecoxib对肺癌A549细胞生长和凋亡的影响并探讨其作用机制。[方法]用TT)比色法检测细胞增殖;流式细胞仪测定细胞周期。[结果]随着Celecoxib剂量的增加和时间的延长,PGE2的含量减少,survivin表达也相应减少,细胞增殖减少而凋亡增加。[结论]Celecoxib可以通过PGE2的途径下调A549细胞survivin的表达并促进细胞凋亡。【关键词】A549细胞 Celecoxib 前列腺素2 环氧合酶2 生存素 CelecoxibPromoteApoptosis
2、inHumanLungCancerA549CellsbyInhibitingSurvivinAbstract:[Purpose]ToinvestigatetheeffectandmechanismofCelecoxibininducingproliferationinhibitionandapoptosisinhumanlungcancerA549cells.[Methods]TheexpressionofsurvivinthroughCelecoxibblockadingeasuredbyusingMethabenzthiazuron(MTT)assay.Cellcyclea
3、ndapoptosisetry.[Results]EN公司;酶联免疫检测仪购自芬兰LabsystemsDragon公司。1.2方法1.2.1细胞培养及提取蛋白A549细胞接种在含10mlDMEM(含10%小牛血清,青霉素和链霉素各100U/ml,下同)的直径10cm的培养皿中,置于37℃、5%CO2无菌培养箱中培养,2~3d换液,0.25%的胰酶消化传代。为避免血清对实验的影响,待细胞长到70%~80%成熟时换无血清DMEM培养液行Celecoxib干预。干预分为Celecoxib量—效关系组和时—效关系组,每组4皿。Celecoxib量—效关系组每皿分别给予Celecoxib
4、0、10、20、40μmol/L,12h后裂解细胞提取蛋白;Celecoxib时—效关系组每皿分别给予20μmol/L的Celecoxib,分别在0、6、12、24h裂解细胞提取蛋白。每皿在裂解细胞前先留取适量培养上清液,用于做ELISA检测PGE2含量。1.2.2ELISA检测培养上清液中PGE2收集Celecoxib干预各个不同浓度点和时间点的细胞培养上清液,取0.5ml上清液加入1NHCl0.1ml,离心10min,收集上清液再加入1.2NNaOH0.1ml以中和酸性化了的样品。把100μl的标准品或样品分别加入相应孔中,余下操作步骤按PGE2ELISA试剂盒要求进行。在
5、酶联免疫检测分析仪上测定OD492nm值,不加样品的孔作为空白对照孔用于调零,每一个标准品和样品均设置复孔,实验重复3次。1.2.3TT检测细胞凋亡情况为了确定Celecoxib是否通过PGE2途径影响细胞的凋亡,96孔培养板中除设置Celecoxib量—效关系组和时—效关系组外,还相应设置了Celecoxib+PGE2量—效和时—效关系组。每个浓度点和时间点均种4孔并设置对照,计算其OD值均值。每孔接种细胞8000个,加入10%DMEM使总体积为200μl,培养24h细胞贴壁后进行干预。Celecoxib量—效关系组设0、10、20、40μmol/L四个浓度点,分别用A1B1
6、C1D1表示;Celecoxib+PGE2量—效关系组设Celecoxib0、10、20、40μmol/L及PGE2100pg/ml四个浓度点,分别用A2B2C2D2表示;干预12h后每孔加入MTT液20μl(5mg/ml),震荡器震匀,继续培养4h后液体倒出拍干,每孔给予DMSO150μl震匀10min,送酶联免疫检测分析仪中计算其OD490nm值。Celecoxib时—效关系组设6、12、24h3个时间点,用B3C3D3表示,分别每孔分别给予Celecoxib20μmol/L;Celecoxib+PGE2时-效关系组设6、12、24h3个时间点,用B4C4D4表示,每孔分别
7、给予Celecoxib20μmol/L及PGE2100pg/ml;无干预对照时—效关系组用B5C5D5表示;操作方法与量—效关系组相同,分别在干预6、12、24h后处理细胞进行实验。1.2.5流式细胞检测细胞周期及凋亡收集不同浓度Celecoxib(0、20、40μmol/L)处理12h后的A549细胞,0.25%胰酶消化及PBS冲洗液,1000r/min离心10min,-20℃预冷的80%乙醇固定,送北京鼎国生物实验室作细胞周期及细胞凋亡分析,实验重复3次。1.3统计学处理计量资料均以x±
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