质粒构建详细方法步骤

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1、一,引物设计:1,选择合适的裁体。酶切位点及其顺序(酶切位点的顺序一定不能颠倒)。2,在NCBI上再次确认0的片段的碱基序列。1,2,3,4,Primer一down核对~~送公司合成使川word排除目的R段里含有的酶切位点,最后确定所使用的酶,设计引物:primer-up:对公司合成的引物离心,lOOOOrpm、5-10分钟、at4°C,在超浄台按照管子上标注的体积加入高压水(2dH20),再把上游引物和下游引物混在一起,at4°C保存。,PCR(P出目的片段):1,揺菌过夜:,韩家淮实验室的菌液,3由的抗生素一)、

2、从韩家淮实验室赠送的菌液里P出目的片段:2,per:2xPFUmixPrimerlu2dH2023ul'1B2°C)3,跑胶、回收:(1),配胶:25ulOsec33cycles94°C5min94°C30sec直来计算,一般低于Tm值1%的琼脂糖胶:人块0.6g的琼脂糖、入60ml的IXTAE煮沸3次.0.6ul的EB(待温度降到5O-6()C左右吋)W点样跑胶。电长度设定,500-1OOObp/min,退火温度根据Tm2b分钟;H,(2),跑胶:130-150Vs25-30分钟左右。(3),紫外灯下观察,切胶(要

3、带防护手套和口罩)4,做胶冋收(天根{TIANGEN}公司的DNA纯化回收试剂盒):按照试剂盒的protocol來做,在胶冋收的最后一步,ElutionBuffer预先在55-65°C温箱屮水浴,并且在加过EB后,放在37°C温箱屮2min。对胶回收的产物跑胶验证。可建立10ul的体系:回收产物2ul、1Oxloadingbuffer2ul>2dH206ub三,酶切、链接:1,目的片段酶切:(37°C酶切过夜或者4小时)50ul的体系insert:上述胶回收产物35ul10xHbuffer(1.5x)7ul11206

4、ullul2lul2,载体酶切:(37^酶切过夜或者4小吋)20ul的体系Vector(lug/ul):2ul10xbuffer(1.5x)3ul,H2013ul西司1lul酶2lul为方便以后使用,fe体可以一次性多切点。3,酶切时,首先要核对一卜*酶的buffer,荷时双酶切时W个酶不能共用一种buffer,那么就要先切一端,酶切冋收后再用另一酶切另一端,然后再酶切产物回收。4,连接:6ul'2xRapidLigationVe:tor0.8ul12ul的体系insert4.5ul(目的是为了多加点insert)T

5、4DNALignaselul感受态细菌10ul四,转化:L⑴、⑵、⑶、质粒1Oul、90秒-一冰上2分钟37°C、180rpm、45分钟。m乂口口u岡又/jji八j:100ml的LB中。再按抗生素:LB=l:1000的比例加入抗生素,(100ml的LB加50ul的2Kx的氨苄)。⑷、250rpm、过夜。五,质粒大抽:六,收菌:取过夜菌至50毫升离心管,离心:6000g、3-5分钟、4'C。再重复一次,每管共收集100毫升过夜菌沉淀。(倒置于草纸上使液体流尽)。七,重悬:每管加入8ml的RES-EF(RnaseA),重

6、悬细菌沉淀一充分Vortex或用枪头吹打沉淀。确保沉淀完全散开,无可见细菌团诀。3,裂解:每管加入等量的LYS-EFbufffer,即8ml。轻轻上下颠倒离心管4_6次,(勿震!!)室温放置^in,使细菌完全裂解,溶液透明,无团块或絮状物。注意:vortex或其它剧烈操作会导致基因组DNA断裂,易导致最终所得质粒被基因组DNA污染4,平衡:(1):滤芯插入柱子,将柱子驾于50ml离心管上(或者直接架于50ml离心管架上)⑵:取15mlEQU-EFbuffer沿滤芯叫周加入一充分平衡滤芯。注意:①离心管内的液体不要浸没

7、滤柱的头,所以要勤于倒弃滤液,②在过滤平衡液的同时,进行5、6步,防止滤芯干掉。4,中和:在等待EQU-EFbuffer滤完时,往裂解好的菌液中加入8mlNEU-EFbuffer,颠倒混匀,冰上孵育5min。(不能vortex)5,离心、过滤:(1):离心中和过的菌液:lOOOOrpm、5-lOmin、at4°C~质粒存在于上清中。(离心使沉淀更加紧密,更集中于管底,对于进一步提高质粒质S会有所帮助)(2):将上清吸入到平衡好的滤芯中,重力自流尽。7,洗一:过滤完毕后,吸取5ml的EIL-REbuffer,沿滤芯四周

8、加入(将粘在滤芯上的质粒洗下來)~过滤完后,将滤芯弃掉。8,洗二:往滤柱中加入35ml的ENDO-EFbuffer—去内毒素9,洗三:待滤完后再加入15ml的wash-EFbuffer—过滤。10,洗脱:取一支干净的15ml超速离心管,将滤完的柱子插入到离心管中,用高压条将二者绑好,往滤柱中加入5mlElu-EFbuffer.(Elu-REbu

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