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时间:2018-09-11
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1、Thanatin突变体在大肠杆菌中的表达及纯化作者:顾林,文良柱,吴国球,徐寒梅,沈子龙【摘要】目的:在大肠杆菌中克隆表达thanatin突变体(ThT)蛋白并纯化。方法:PCR合成ThT基因并克隆到pET32a载体的BamHⅠ和XhoⅠ酶切位点之间,构建ThT原核表达载体(pET32aThT)并转化到大肠杆菌BL21融合表达,通过正交实验优化表达条件,HisBind介质纯化。考察经酶切纯化后的重组ThT对4种供试菌的最低抑制浓度。结果:菌体在LB培养基(pH65)培养4.5h,IPTG0.4
2、mmol·L-1诱导7h,ThT融合蛋白大量可溶性表达,经药敏试验证明纯化的重组ThT具有预期的抗菌活性。结论:本研究为通过大肠杆菌体系表达重组ThT抗菌药物奠定了基础。【关键词】thanatin;突变体;大肠杆菌;融合蛋白;纯化;表达;药敏试验 Thanatin是在昆虫斑腹刺益蝽(Podisusmaculiventris)中发现的,由21个氨基酸残基组成的广谱抗菌肽,对革兰阳性、阴性菌以及某些真菌均有抑制作用,而且对一些临床上的耐药菌也有良好的抗菌活性[1]。Lee等[2]研究了thanatin的各种
3、突变体,发现将其结构中第15位的苏氨酸残基删除后,对革兰阳性菌的抑制效果增强,而对革兰阴性菌和真菌的最小抑菌浓度不变,其二级结构仍保持thanatin原有的结构,即N末端7个氨基酸臂和C末端的14个氨基酸组成的β片层结构,通过抑制细胞呼吸达到抗菌的效果[3]。目前国内外对thanatin已有深入的研究[45],而对具有更佳抗菌效果的突变体相关研究却比较少。本研究旨在将人工合成的thanatin突变体(ThT)基因克隆到pET32a融合表达载体中,通过正交设计考察培养基pH值、诱导剂用量及诱导时间与融合蛋白
4、表达水平的关系,使融合蛋白在大肠杆菌BL21(DE3)中高效可溶性表达,纯化融合蛋白并经凝血酶切割,考察纯化的重组ThT作为抗菌药物的应用价值。 1材料与方法 1.1菌种和载体大肠杆菌菌株BL21(DE3)和pET32a载体由第一作者所在实验室保存,标准菌株大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽胞杆菌和铜绿假单胞菌由中国药科大学微生物学教研室提供。 1.2酶和试剂限制性内切酶、Taq酶、dNTPs、DNAmarker、异丙基硫代βD半乳糖苷(IPTG)为MBI产品,PCR引物由上海生工生物工程有限公司合
5、成,丙烯酰胺、亚甲基双丙烯胺及Tris碱为BBI产品,低分子质量蛋白质标准品为Promega公司产品;HisBindResin为Novagen公司产品,Thrombin及其10倍缓冲液为Sigma公司产品,结合缓冲液、洗涤缓冲液及洗脱缓冲液按NovagenHisBindResin试剂盒配制,其余试剂为进口分装产品。6 1.2方法 1.2.1ThT基因的合成与表达载体pET32aThT制备及转化 1.2.1.1ThT基因的合成根据ThT基因的氨基酸序列GSKKPVPIIYCNRRGKCQRM
6、和大肠杆菌的偏爱密码子逆推出突变体的cDNA序列,并设计出PCR的引物。引物1:CGCTCGAGTTACATACGCTGGCACTTACCCCTACGGTTACAGTAGATTATC;引物2:GCGGATCCCTGGTGCCGCGCGGCAGCAAGAAGCCTGTCCCGATAATCAACTGTAAC。单下划线序列为限制性内切酶切位点,双下划线为编码凝血酶酶切位点的序列。引物1和2互为模板,PCR扩增基因。PCR反应体系(50μl):引物浓度2μmol·L-1,dNTPs40μmol·L-1,MgCl21μ
7、mol·L-1,Taq酶0.5U,PCR反应程序:94℃5min;94℃30s,60℃30s,72℃30s,30个循环;72℃7min。 1.2.1.2表达载体pET32aThT构建PCR产物经纯化后用BamHⅠ和XhoⅠ双酶切,酶切得到的片断由BamHⅠ和XhoⅠ位点克隆到载体pET32a,转化到大肠杆菌BL21菌株,涂布含氨苄青霉素100mg·L-1的LB平板,37℃培养过夜,挑选克隆培养提取质粒,BamHⅠ和XhoⅠ单酶切验证,进一步测序确定(由上海生工生物工程有限公司完成)。 1.2.2融合蛋
8、白可溶性表达的条件优化将测序正确的阳性菌株转入含氨苄青霉素100mg·L-1的LB培养液,37℃培养过夜。挑选1个单克隆菌落,转入含氨苄青霉素100μg·ml-1的LB培养液,37℃培养过夜作为种子液,取适量菌液。按1%的接种量放大培养,在摇瓶条件下摸索融合蛋白表达的最佳条件。正交设计在单因素考察的基础上,取4因素(培养基pH值、诱导剂用量、加诱导剂前的培养时间、诱导时间)各4水平按L16(45)进
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