uv处理筛选耐高浓度乙醇酿酒酵母菌株

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1、《UV处理筛选耐高浓度乙醇酿酒酵母菌株》诱变方法:预处理:将诱变所需的仪器设备在无菌操作台上灭菌,紫外灯预热30min,将磁力搅拌器的电压调至4V,将制备好的菌悬液倒入含有磁珠的平皿中,开启磁力搅拌器的电源开关,待菌体均匀混合后,开始诱变。诱变:将菌悬液用一次性塑料针管吸取5ml于编号的试管中,将紫外灯对准平皿的同时开始记时,每10s取一次样于对应试管中,直至90s停止照射,则得到10种菌悬液。后处理:将诱变之后的菌悬液依次稀释10倍、100倍,再进行涂布,每次2滴(约0.1ml)即可,再将未做稀释处理的诱变菌株的10种菌悬液依次涂布,再重复一次,10倍、100倍也

2、做同样处理,共60个培养皿,涂好后,放入暗箱(防止光复活)培养箱于25℃培养24h。分析方法:酵母生长的测定:测生长量,包括称干重法、比浊法、测含氮量法等。记繁殖数,包括计数板法、菌落计数法等酵母死亡率的测定:耐酒精酵母筛选方法:灭菌麦芽汁→冷却为40℃左右→加入无水乙醇,配成浓度分别为4%vol、6%vol、8%vol、10%vol、11%vol、12%vol、14%vol→紫外照射后的平板→挑取大且光滑的单菌落→接种待测酵母菌→25℃培养24h→观察产气情况→记录结果→分离纯化测定时的菌种→保藏菌种→挑取单菌落→接种针点于TTC下层平板→30℃恒温培养24h→倒

3、TTC上层平板→30℃恒温培养3h→找出TTC上层平板上变红的菌落(候选的突变体)→转接于固体斜面→30℃恒温培养24h→菌落形态观察与鉴定→显微形态的观察→挑出变红(深色)的单菌落→接种于麦芽汁培养基中→扩大培养→分离纯化菌种→不同温度条件下发酵7d→每隔24h测其pH值、酸度,待发酵结束时测酒精度、耗糖率和总酸度。镜检方法:用胶头滴管吸取摇匀的菌悬液滴到载玻片上,盖上盖玻片,先用低倍镜观察,待视野清晰之后换高倍镜观察,一般40倍物镜即可,若菌体较密集,则将菌悬液适当稀释,直至稀释度适合为止。麦芽汁发酵法:初筛选出的菌株活化后,接入麦芽汁培养基中扩大培养酵母菌,使

4、活菌浓度为1.6×10个/ml,然后取5ml接入装有150ml麦芽汁的锥形瓶中,30℃培养7d,每天对发酵液进行分析(可溶性固形物、糖度、酒精度、pH值和酸度)。复筛出性状最为优良的诱变菌株。二氧化碳失重的测量:减重法取5ml装入150ml的锥形瓶中装入150ml麦芽汁,适宜温度条件下培养7d,每天称重,同样取5ml于100ml锥形瓶中记录每天失重情况,待发酵结束时称总失重。仪器:SW-CJ-2FD型双人单面净化工作台、立式高压蒸气灭菌锅、精密酸度计、智能型生化培养箱、恒温培养摇床、光学显微镜、旋转蒸发仪、数码相机、CJ-1磁力搅拌器、ZF-5手提式紫外灯。要用到1

5、0个试管、60个培养皿、10个锥形瓶、3个烧杯和其他器皿若干。《利用广谱性和特异性组合诱变技术选育辅酶Q10高产菌》诱变方法(1)诱变处理  接一环出发菌于种子培养基中,摇瓶培养24h,取5ml培养液于10000r/min离心5min收集菌体,用0.1mol/L磷酸缓冲液(pH=6.5)离心洗涤菌体2次,制成n=10ml菌悬液.(1)UV照射:取10ml的10ml菌悬液至无菌平皿内,置于波长253.7nm,功率30W的紫外灯下30cm处,开盖振荡分别照射5s,10s,20s,30s和40s.(2)NTG处理:取10ml的10ml菌悬液,加入配置好的NTG溶液,使NT

6、G的终浓度为500mg/L,分别处理10min、20min、30min、40min和50min后,用0.1mol/LpH6.5磷酸缓冲液洗涤离心细胞3次.(3)UV射线和NTG复合诱变:取10ml的10ml菌悬液至无菌平皿内,UV照射5s后加入NTG,使其最终浓度分别为200mg/L、300mg/L和400mg/L,处理20min后用0.1mol/LpH=6.5磷酸缓冲液离心洗涤细胞3次.(2)平板筛选  抗性突变株的获得:取诱变处理的菌液接入种子培养基中,后培养12h后,离心洗涤3次,稀释后直接涂布于细菌基本培养基平板上,然后在平板中间加入一定量的抗性物质如Eth

7、、ActD、V,30℃培养4~5d,会出现明显的抑菌圈,在抑菌圈内挑选生长良好的单菌落即抗性突变株.X-gal利用能力提高的突变株的筛选:后培养的菌液稀释后直接涂布于X-gal平板上,培养2~3d.出发菌株的菌落为淡蓝色,挑出呈深蓝色的菌落,即为X-gal突变株.(3)摇瓶筛选  将平板筛选获得的突变株接入种子培养基,装液量为50ml/250ml三角瓶,30℃,200r/min振荡培养24h.取种子培养液以7%(V/V)接种量接入发酵培养基,30℃、200r/min振荡培养80h.每个样品做3个平行样,测定微生物生长量及发酵液中辅酶Q10含量.通过摇瓶初筛、复筛

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