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时间:2018-05-01
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1、AGE及葡萄糖对THP1巨噬细胞CXCL16mRNA表达的影响【摘要】目的:探讨晚期糖基化终末产物(advancedglycationendproducts,AGE)及葡萄糖对THP1巨噬细胞CXCL16mRNA表达的影响.方法:①选择合适的培养时间;②不同浓度的AGE与THP1巨噬细胞共同孵育;③不同浓度葡萄糖与THP1巨噬细胞共同孵育;分别用AGE、葡萄糖及同时加入AGE和葡萄糖与THP1巨噬细胞孵育;⑤采用RTPCR检测孵育后CXCL16及CD36mRNA的表达量,观察和比较各组孵育后CXCL16及CD36mRNA的表达情况.
2、结果:①随着培养液中AGE浓度的增加CXCL16及CD36mRNA的表达增加;②随培养液中葡萄糖浓度的增加CXCL16及CD36mRNA的表达增加;③AGE及葡萄糖同时作用于THP1巨噬细胞时,对CXCL16及CD36mRNA的表达上调作用大于AGE或葡萄糖单一因素的影响.结论:AGE及葡萄糖呈时间和浓度依赖性上调THP1巨噬细胞CXCL16mRNA的表达,并且AGE及葡萄糖两者合用可以进一步增加这种表达.这可能为糖尿病动脉粥样硬化机制的探讨提供新的线索.【关键词】CXCL16;糖基化终产物,高级;葡萄糖;糖尿病0引言结合磷脂酰丝氨酸和氧化
3、低密度脂蛋白(oxidizedloa公司;葡萄糖购自北京泛基诺科技有限公司;TRIzol及其它RNA提取试剂为Gibco公司产品;所有引物由上海生工公司合成;cDNA合成酶(MMLV)及Taq酶购自北京天为时代公司;其他试剂均为进口或国产分析纯.1.2方法1.2.1THP1细胞株培养人单核细胞系THP1株购于中科院上海细胞生物所细胞中心.THP1细胞生长于含有低糖(5.6mmol/L),100mL/L胎牛血清,10mmol/LHEPES,1×105U/L青霉素和100mg/L链霉素的RPMI1640完全培养基中,置于37℃,50mL/LC
4、O2饱和湿度培养箱内培养.1.2.2实验分组取对数生长期THP1细胞(1×106个/皿)进行实验,每次实验前用100nmol/LPMA孵育THP1细胞48h,使其诱导分化为巨噬细胞[6].①单独AGE处理组:首先确定合适的培养时间,即用100mg/LAGE与THP1巨噬细胞孵育不同时间(0,6,12,24,48,72h),根据培养结果,选择72h为合适孵育时间,不同浓度的AGE(0,50,100,150mg/L)与THP1巨噬细胞共同孵育72h;②单独葡萄糖处理组:用高浓度葡萄糖培养液(30mmol/L)与THP1巨噬细胞孵育不同时间
5、(0,6,12,24,48,72,96h),确定72h为合适培养时间后,用不同浓度葡萄糖(5.6,10,20,30mmol/L)与THP1巨噬细胞共同孵育72h;③AGE和葡萄糖联合作用组:分别用AGE(100mg/L)、高浓度葡萄糖(20mmol/L)及同时加入AGE(100mg/L)和葡萄糖(20mmol/L)与THP1巨噬细胞孵育72h.1.2.3逆转录聚合酶链反应检测CXCL16及CD36mRNA的表达TRIzol试剂提取细胞总RNA,cDNA反应总体系为20μL:10mmol/LdNTP0.5μL,0.1mol/LDTT1μL,
6、500mg/LRandomprimer0.25μL,6.7×108nkat/LRNasin0.5μL,3.3×107nkat/LMMLV1μL,5×缓冲液2.0μL.以cDNA为模板,分别使用下述3对引物进行PCR,扩增CXCL16基因的引物序列为:上游5′ACTCAGCCAGGCAATGGCAAC3′,下游5′GGTATTAGAGTCAGGTGCCAC3′,扩增片段长度为693bp.扩增CD36基因的引物序列为:上游5′CTCCCAAAGTGCTGGGATTA3′,下游5′AGCCTTTGGGGGTCTTTCTA3′,扩增片段
7、长度为246bp.扩增内参照磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)基因的引物序列为:上游5′CTGGTCACCAGGGCTGCTTTT3′,下游5′CATGAGGTCCACCACCCTGTT3′,扩增片段长度为936bp.PCR反应条件为:95℃5min预变性,95℃30s变性,60℃30s退火,72℃30s延伸,30个循环,72℃继续延伸10min.PCR反应总体系为20μL:无RNA酶水14.75μL,10×缓冲液2.5μL,10mmol/LdNTP0.5μL,100g/L引物各1μL,8.3×107nkat/LTaq酶0.25μL,cDN
8、A模板1μL.1.2.4RTPCR产物检测及半定量分析反应结束后,取5μLPCR产物用10g/L的琼脂糖凝胶恒压80V电泳30min,溴化乙锭染色.
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