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1、莲藕愈伤组织诱导及组织学观察莲藕愈伤组织诱导及组织学观察摘耍:以莲藕(Nelumbanucifera)的顶芽和侧芽为外植体,接种于不同外源激索配比的MS培养基上进行愈伤组织诱导。结果表明,愈伤组织诱导的最佳培养基为MS基本培养基+0.5mg/L6-BA+4.0mg/L2,4-D+O.1mg/LNAA+O.20%Gelrite,诱导率在20%以上,且愈伤组织状态良好,颜色淡黄色至黄褐色,生长量较大。其中,2,4-D在莲藕愈伤组织诱导中起重要作用。从组织学切片的显微观察结果分析,单宁类物质可能是导致莲藕愈伤组织诱导过
2、程中极易褐化的重要因索之一。以Gelrite代替琼脂粉作为固化剂,可明显改善外植体的褐化现象。关键词:莲藕(Nelumbanucifera);愈伤组织;单宁;褐化中图分类号:S645.1;Q813.1+2文献标识码:A文章编号:0439-8114(2014)03-0701-03莲藕(Nelumbanucifera)为睡莲科(Nymphaeaceae)莲属(Nelumbo)多年生大型水生草本植物,是双子叶植物的较低级种,原产于中国和印度,在中国栽培历史悠久[1]。在自然选择和人工选择屮,产生很多变异,因而种质资源丰
3、富。莲藕营养丰富,含淀粉、蛋白质、糖、维生素等多种营养成分,营养价值较高[2]。然而,由于莲藕主耍以块茎进行无性繁殖,多年反复栽培后,种质容易退化。此外,以常规方法进行莲藕的繁育,繁殖率低、用种量大、生产成本较高,且病毒病、褐斑病、腐败病等病害易发生,给莲藕的制种和品质改良带来了的困难,使其产量和质量受到影响[3]。利用组织培养技术进行莲藕的培养可提高其无性繁殖率,并保持良好的遗传稳定性[4]o本试验以莲藕顶芽及侧芽为材料进行愈伤组织诱导,并对其发生过程进行了组织学观察,对愈伤组织的发生机理进行了初步研究,为莲藕
4、的种质保存及品种改良奠定了基础。1材料与方法1.1材料供试莲藕品种为鄂莲五号“3735”(品种号),由湖北省武汉市东西湖区吴家山西湖大队提供。于2010年3至4月栽种期取藕头饱满、顶芽完整的种藕为试验材料。1.2方法1.2.1愈伤组织诱导1)材料处理。选取莲藕顶芽与侧芽,将其外部叶片剥去,在自来水下冲洗干净,然后在无菌条件下用75%的乙醇消毒30s,随即放入0.1%升汞溶液中处理15min,用无菌水漂洗4次,横切成0.3〜0.5cm3的外植体,接种到培养基上进行培养。2)愈伤组织诱导培养基。以MS为基本培养基,p
5、H调至5.8-6.0,蔗糖3%,添加不同浓度水平的6-BA、NAA、2,4-D、琼脂粉或Gelrite.活性炭,组成愈伤组织诱导培养基,以这5个因素,每因素4个水平进彳亍L16(45)正交试验,试验因素和水平见表1。3)培养条件。温度为(25±2)°C,避光培养。1・2・2愈伤组织发生过程的组织学观察接种后,每隔10d取具有代表性的样品组织块,FAA固定液固定24h,70%乙醇:冰醋酸为3:1(V/V)的溶液屮保存。材料收集齐后,用70%乙醇将酸洗净,经乙醇/二甲苯系列脱水后,石蜡包埋,石蜡切片机切片,厚度10u
6、m,切片脱蜡复水后釆用苏木精染色法染色,乙醇系列脱水后二甲苯透明,中性树胶永久封片[5]。采用光学显微镜镜检拍照。2结果与分析2.1不同培养基配比对莲藕愈伤组织诱导的影响将莲藕顶芽和侧芽横切成0.3-0.5cm3的外植体,按照表1所示的正交试验,接种在不同浓度配比的愈伤组织培养基中诱导,10d左右可见外植体组织膨大,30d左右开始形成愈伤组织(图1),50d左右大量愈伤组织形成,此时若不及时史换培养基,组织则极易褐化死亡。将50d吋愈伤组织的诱导情况进行统计分析,结果如表2所示。结果表明,不同成分配比的培养基对莲
7、藕茎尖的愈伤组织诱导有较大的影响。正交试验结果(表2)表明,从愈伤组织诱导率的结果来看,13号试验的效果最好,达到36.67%,其次为7号试验,结果为33.33%。通过比较极差R值的大小,对愈伤组织诱导率的影响由大到小的因素为2,4-D、固化剂、6-BA、活性炭、NAAo表明2,4-D的浓度水平的变化对莲藕愈伤组织的诱导起主导作用,其极差可达25.000;且随着2,4-D浓度的增加,愈伤组织诱导率也明显增加。其次为固化剂的影响,添加Gelrite比添加琼脂粉对愈伤组织的诱导更有利,然而并不是浓度越高效果越好,其最
8、佳浓度为0.2%o6-BA的添加也对愈伤组织的诱导起到明显作用,其R值为8.335o活性炭和NAA对愈伤组织诱导率的影响不大,其极差分别为7.500和5.829o愈伤组织诱导50d左右的情况见表2。当2,4-D浓度增高吋,虽然愈伤组织诱导率明显增加,但形态上逐渐出现大量结节状愈伤,此类愈伤组织很难分化成苗,因此,选择2.0或4.0mg/L的2,4-D对于愈伤组织的诱导更为