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时间:2018-05-03
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1、人骨髓间充质干细胞体外成软骨诱导研究【摘要】目的:研究人骨髓间充质干细胞(mesenchymalstemcells,MSCs)在体外培养过程中的增殖和成软骨分化现象和规律。方法:以密度梯度离心法分离健康成人髂骨MSCs,观察体外培养过程中细胞形态、生长和增殖现象。取第三代细胞给予地塞米松,维生素C和不同剂量转化生长因子β1(transforminggroenonandruleofmultiplicationandchondrogenesisofmesenchymalstemcells(MSCs)derivedfromhumanbon
2、emarroIliumandpurifiedbydensitygradient.Toobservetheconformation,groultiplicationofMSCsculturedinvitro.SCsandinducedthemintochondrogenicdifferentiationethasone,VitaminCandTGF-β1indifferentdosageformedchondracytesinduction.After3easuredthesulfateglycosaminoglycanmunoflu
3、orescenceandglycosaminoglycanetry.Results:MSCscanbeculturedostevidentexpression.Conclusion:MSCshavestrongabilityofmultiplicationandcouldbeinducedintochondrocytesundercertaincircumstances.TGF-β1isthemajorfactorofchondrogenesisesenchymalstemcells;chondrogenesis;TGF-β1 各
4、种由创伤和疾病引起的关节软骨缺损在临床上十分常见,目前临床上尚无有效的治疗方法。近年来组织工程技术的发展给修复关节软骨缺损带来了希望。最近的比较研究证实骨髓间充质干细胞(mesenchymalstemcells,MSCs)是修复全层软骨缺损的最佳细胞源[1]。笔者采集健康人骨髓,以密度梯度离心法分离人MSCs,行体外培养扩增及成软骨诱导,希望为临床治疗软骨缺损提供参考。 1材料与方法 1.1对象 骨髓标本取自3名健康成年男性自愿者(28,34,37岁)髂后上棘。3人均无全身性疾病和代谢性疾病。取得知情同意后,无菌条件下抽取骨髓
5、5ml置于抗凝环境。 1.2主要试剂 L-DMEM培养基(Gibco公司),类标准胎牛血清(民海生物公司),转化生长因子(TGF)-β1(美国Peprotech公司),维生素C、地塞米松、胰蛋白酶、硫酸软骨素(Sigma公司),人淋巴细胞分离液Ficoll(天津灏洋生物公司),兔抗人二型胶原多克隆抗体、浓缩型Cy3-SABC免疫荧光试剂盒(博士德公司)。 1.3人MSCs的分离和体外培养 取2.5ml骨髓加入等量PBS稀释,吹打混匀,贴壁缓慢加入已有5mlFicoll分离液的离心管。2000r/min离心20min,吸取界面
6、云雾状白膜层(富含MSCss)。加入PBS,800r/min离心10min洗涤2遍,计数。以5×106/cm2接种于细胞培养瓶,加入完全培养基(含10%胎牛血清的L-DMEM培养基)。培养48h后半量换液,弃去不贴壁的杂细胞。以后2~3d换液1次,7~10d即可见较多贴壁细胞。细胞90%融合时0.25%胰酶消化,1∶3传代培养。连续培养三代后MSCs基本纯化。取第三代细胞按1×105/cm2接种96孔板,于传代后8d内每天取10孔行MTT检测,绘制传代细胞生长曲线。 1.4成软骨细胞诱导培养 配制成软骨诱导条件培养基①~④号:完
7、全培养基加地塞米松(10-8mol/L),TGF-β1(0,5,10,20μg/L)、维生素C(10mmol/L)。取长势良好的第三代MSCs,分4组(命名为A,B,C,D)分别按1×105/cm2接种于含条件培养基①~④号的24孔板(每组12孔)。每日用倒置相差显微镜观察细胞形态。另取4个6孔板,按1×105/cm2接种长势良好的第三代MSCs,分别用条件培养基①~④号诱导培养3周,用以检测蛋白多糖(proteoglycan,PG)含量。 1.5软骨细胞检测 定向诱导培养3周后,用4%低聚甲醛固定24孔板中细胞20min后行以
8、下检测。(1)甲苯胺蓝染色:用70%乙醇、浓度为0.2%甲苯胺蓝染色1min,再以95%的乙醇分色10min,纯丙酮脱水2次,每次5min,在倒置相差显微镜下观察细胞形态。(2)阿利新蓝染色:用pH2.5的阿利新蓝染色30min,蒸馏
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