ri质粒介导的毛状根技术在获得人参药用成分研究中的应用

《ri质粒介导的毛状根技术在获得人参药用成分研究中的应用》由会员上传分享，免费在线阅读，更多相关内容在应用文档-天天文库。

1、Ri质粒介导的毛状根技术在获得人参药用成分研究中的应用　　1Ri质粒转化形成毛状根的机制［3~7］　　Ri质粒是位于发根农杆菌染色体之外的独立的双链环状DNA，一般在180～250kb之间，具有2个非常主要的功能区：TDNA区（TransferredDNAregion）和Vir区（virulanceregion）。农杆碱型Ri质粒上的TDNA是不连续的，分为TLDNA和TR-DNA。TRDNA上带有编码农杆碱合成酶基因（ags）和生长素合成酶基因（tms1和tms2），后者指导IAA的合成。　　发根

2、农杆菌侵染形成毛状根的过程可分为四个步骤：①发根农杆菌感染植物伤口后，受伤的植物细胞合成一种特殊的小分子化合物，如酚类化合物，从而诱导Ri质粒的Vir区基因群活化；②在Vir基因表达产生的酶的作用下，TDNA被切下；③TDNA转移到植物细胞并整合到植物基因组DNA；④TDNA在植物细胞中得到转录和翻译，发挥其机能，刺激植物细胞形成毛状根。　　2Ri质粒介导的毛状根技术在获取人参药用成分研究中的应用　　众多的学者已经对人参毛状根体系的建立，不同的培养基成分、菌株、诱导子对毛状根生成以及对产生次生物质的

3、影响，人参毛状根生理生化活性，利用人参毛状根合成其他药物成分以及人参毛状根的生物反应器培养等方面进行了大量的工作，为获取人参药物成分的工业化生产奠定了基础。　　2.1Ri质粒介导的人参毛状根转化体系建立的研究最早在1987年，Yochikaata等［９］报道人参毛状根在培养的前两周生长很快，通过间隔一定时间更换培养基可保持毛状根的快速生长，培养32d总人参皂苷含量相当于田间栽培5年生人参根中的皂苷含量水平。刘峻等［１０］首次从人参带叶幼茎处诱导出毛状根，并证实了在转化细胞中有农杆菌Ri质粒TDNA特

4、异的表达产物冠瘿碱。　　2.2不同发根农杆菌株、培养基及成分、植物激素和诱导子等对人参毛状根生长及药效成分的影响人参毛状根培养的最终目的是获得人参药用成分，对不同的发根农杆菌株、培养基及成分、植物激素和诱导子等条件的研究及其合理优化是提高人参毛状根生长量和药用成分的重要条件。　　现有资料表明不同的菌株诱导毛状根的状况不同，刘峻等［１０］用发根农杆菌1601、LBA918、R1000、A4和15834等5种不同发根农杆菌感染人参，只有菌株15834可转化人参毛状根。赵寿经等［１１］利用A4菌株成功诱导

5、了人参毛状根。而Shu等［１２］认为农杆菌ATCC15834形成的毛状根中人参皂苷的产量高于农杆菌MAFF0301724形成的人参毛状根。由农杆菌ATCC15834［１２］、农杆菌KTCT2744［１３］分别转化成的毛状根，在不同的培养条件下，分别生长最好，人参皂苷的产量最高。Liu等［１４］研究认为Ri质粒中TDNA片段中rolA、rolB基因对毛状根中人参皂苷产量的影响很小，而rolC基因对人参毛状根中人参皂苷产量的提高具有重要作用。　　孙彬贤等［１５］研究了由发根农杆菌15834诱导的人参毛状

6、根在不同培养基上的生长和人参皂苷的含量变化，确定了最佳的培养基和培养条件。培养基中不同的元素成分也对人参毛状根皂苷的生成有重要影响。硝态氮源有助于人参毛状根中人参皂苷的生产，而氨态氮源抑制人参皂苷的生产；增加培养基中大量元素钾、镁、钙的含量或降低微量元素钴、铜、碘的含量能提高人参皂苷的产量，提高锰的含量也有提高人参皂苷产量的效果［１６］。　　周倩耘等［１７］认为适宜浓度的IAA、IBA、NAA、2，4D植物激素，均可不同程度地促进人参毛状根的生长以及皂苷的积累，同时能影响单体皂苷的分布。刘峻等［１８

7、］认为用NAA、KT和乙酰丁香酮处理可提高人参毛状根转化率并缩短转化时间。　　周倩耘等［１８］研究了诱导子水杨酸（SA）、酵母提取物（YE）、AgNO3和CaCl2对人参毛状根中皂苷含量的影响，认为诱导子可能是调节人参毛状根中皂苷积累的有效物质，而且SA能促进人参皂苷分泌到细胞外并在培养液中积累。刘峻等［１９］认为真菌诱导子不但能影响人参毛状根总苷的合成量，也能使某些单体皂苷消失或增加，同时也影响人参毛状根的生物量，培养过程中通过外源性诱导子的添加，有利于人参毛状根次生代谢产物的定向积累。化学诱导子

8、茉莉酮酸有显著促进人参毛状根中人参皂苷积累和提高人参皂苷Rb族所占比例的作用［２０］。　　　2.3人参毛状根生理生化活性的研究刘峻等［２１］对人参愈伤组织及转化的毛状根在生长周期中ATP的动态含量进行测定和比较，相对人参愈伤组织，人参毛状根是分生代谢能力较强的组织，其次生代谢产物人参皂苷的合成能力也较愈伤组织强。他们又研究了人参毛状根培养过程中对3种重要活性氧ROS清除能力的动态变化，结果符合人参毛状根生长的S型曲线，印证了人参毛状根的生长和衰老过程［２２］。初步验证