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时间:2018-05-01
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1、白藜芦醇诱导大鼠原代脂肪细胞凋亡及机制:陈思凡,周妮曼,郑琳,柯梁汝,单智铭,冯翔【摘要】【目的】探讨白藜芦醇(Res)对大鼠原代脂肪细胞凋亡的影响及其机制。【方法】培养大鼠原代脂肪细胞,添加不同剂量的Res干预,用Hoechst33258染色,在荧光显微镜下观察细胞核形态;用DNALadder实验观察DNA断裂的条带;检测各组培养基和细胞内的乳酸脱氢酶(LDH)含量,计算LDH漏出率;用流式细胞仪测定细胞凋亡率;ethods】Ratprimaryadipocytesorphologicaltransformat
2、ioninedicroscope.DNALadderassaycellapoptosis.TheLDHcontentinmediumandcellseasuredtocalculatetheLDHleakingratio.Thenumberofapoptoticcellsetry.Theexpressionofsilentinformationregulator1(Sirt1),CytochromeC,CleavedCaspase9,CleavedCaspase3inedusingSO溶解,配置成80mmol/L
3、的储备液,DMSO在培养基的终浓度低于0.1%),DMSO,Ⅰ型胶原酶,Hoechst33258,购自美国Sigma公司;高糖DMEM培养基,新生牛血清,购自美国Gibco公司;DNAmarker,DNALadder检测试剂盒,购自上海Beyotime公司;LDH检测试剂盒,购自南京建成生物工程研究所;细胞凋亡测定试剂盒,购自美国BD公司;兔抗Sirt1单克隆抗体,购自英国abcam公司;兔抗CytochromeC、CleavedCaspase9、CleavedCaspase3单克隆抗体,购自美国CST公司;兔抗
4、GAPDH单克隆抗体,购自武汉Boster公司;细胞浆蛋白抽提试剂盒,BCA试剂盒,HRP标记的抗兔二抗,购自上海Beyotime公司。 1.2方法 1.2.1大鼠原代脂肪细胞的培养 雄性SD大鼠10只,体质量160~180g,购自广东省实验动物中心。原代脂肪细胞分离与培养实验过程:取大鼠1只,麻醉处死后无菌分离附睾脂肪组织,以眼科剪剪200~300次,剪碎至1mm3以下,用1.5g/L的Ⅰ型胶原酶消化细胞,放入水浴摇床,100~120r/min,37℃水浴消化约40min,100目的网过滤,静置于离心管约
5、5min,脂肪细胞自然上浮,将成熟的脂肪细胞用培养基重复洗2次,在培养管中加入无酚红的DMEM培养基(100mL/L新生牛血清、100IU/mL青霉素、100IU/mL链霉素),观察细胞状况。取3只SD大鼠,按以上方法分离培养原代脂肪细胞,按照下面的实验方法添加不同剂量的Res,在37℃、体积分数为5%的CO2、95%湿度的细胞培养箱里进行细胞培养和干预试验。各实验重复3次。 1.2.2Hoechst33258染色 细胞用20、40、80μmol/L的Res作用12h,对照组添加相等量的DMSO作为参照,药物
6、处理完毕后用PBS洗涤2次,用甲醇/冰醋酸(3:1)于4℃固定10min,洗涤后用Hoechst33258(浓度为5mg/L)避光染色15min。用PBS洗涤1次。进行细胞计数后,取约6000个细胞均匀涂在载玻片上,用甘油封片后在荧光显微镜下观察并拍照(激发波长340nm,发射波长420nm)。 1.2.3DNALadder实验 细胞经过20、40、80μmol/L的Res干预6h或12h后,按照DNALadder试剂盒说明书,利用离心柱抽提法,抽提并纯化各组细胞的DNA,取20?滋L的DNA样品,加6×DN
7、A上样缓冲液(体积分数30%甘油,0.25%溴酚蓝),在质量分数1.5%的琼脂糖凝胶(含0.5?滋g/mL溴化乙锭)中进行电泳(40V,电泳约3h),染料泳动至2/3处。在凝胶成像分析仪上对凝胶进行拍照,观察DNALadder的形成。 1.2.4乳酸脱氢酶含量的检测 收集各组的培养基和细胞,细胞在PBS中重悬,通过超声裂解细胞,按照LDH检测试剂盒说明书,检测并计算各组培养基和细胞内的乳酸脱氢酶(lacticdehydrogenase,LDH)含量。LDH漏出率(%)=c培养基(LDH)/(c培养基(LDH)
8、+c细胞内(LDH))。 1.2.5流式细胞仪测定细胞凋亡率 细胞经20、40、80μmol/L的Res干预12h后,收集各组细胞,按照细胞凋亡率测定试剂盒的方法,分别添加AnnexinV和7-AAD,处理后在流式细胞仪上测定细胞凋亡率。 1.2.6CytochromeC、CleavedCaspase9、CleavedCaspase3的蛋白表达 用NP40裂解细胞
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