实验五-急性不全窒息及全窒息幻灯片

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实验五急性不全窒息及全窒息

1目的要求：1）复制急性不全窒息及全窒息模型2）观察急性不全窒息及全窒息及其恢复过程中，动物的血压、呼吸以及机体一般情况的变化过程

2实验动物：家兔

3药品与器材：1）药品1％普鲁卡因，1%肝素，尼可刹米，10％GS，去甲肾上腺素2）器材电脑，动物台，手术器械等

4实验步骤与观察：1）家兔捕捉，固定，剪毛头部四肢

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6实验步骤与观察：1）家兔捕捉，固定，剪毛头部四肢颈部耳朵

7紧贴皮肤

8实验步骤与观察：2）家兔颈部局部麻醉喉结和胸骨角中点进针边退边注射普鲁卡因3ml（向上、下各注射1.5ml）

9实验步骤与观察：3）手术操作，先分离气管，行气管插管在气管上做一个倒T形切口：在喉结下方第4、5环状软骨间剪开肌肉，剪开气管周长约1/3长度，再再向上剪开气管约2CM皮下钝性分离，注意避免损伤血管！

10剪开气管周长约1/3长度

11再向上剪开气管约2CM

12将气管插管插入其中，并用鞋绳固定

13Y形管一端套有橡皮管，另一端连接呼吸换能装置联接电脑，以描记呼吸。

14实验步骤与观察：4）手术操作，分离颈总动脉，插管颈总动脉分离长度：3～4cm插管前准备好充满肝素的动脉导管颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住小指托住血管，眼科剪45℃剪开动脉管径1/3～1/2（尽量靠近头端）导管插入动脉1cm，结扎紧缓慢松开动脉夹在气管侧后方，注意避免损伤血管！

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16实验步骤与观察：5）电脑操作

17左键双击“RM6240系列多道生理信号采集处理系统usb2.0S(I)”

18在1通道右侧左键单击“生物电”箭头。左键下拉菜单至“血压mmHg”单击

19在2通道右侧左键单击“生物电”箭头。左键下拉菜单至“常用项目”－“呼吸运动”－“压力法”

20（1通道已选择为“血压”测量）（2通道已选择为“呼吸运动”测量）将鼠标指针移至标记处，当指针变为双箭头后，下拉，分别将1、2通道示波栏拉宽，便于观察

21（1、2通道示波栏均已拉宽）

22在1通道（血压测量通道）左侧左键单击“选择”箭头。左键下拉菜单至“通用实时测量”－“全屏”，单击。再左击上侧“开始”按钮（蓝色三角）

23观察并记录平均动脉压的变化观察并记录呼吸运动的变化

24实验步骤与观察：先观察并记录动物正常呼吸、血压。6.1）复制模型（急性不全窒息）用止血钳夹闭橡皮管管腔1/3并持续2分钟，观察呼吸、血压变化并记录。（观察动物表现为吸气性呼吸困难还是呼气性呼吸困难）松开止血钳5分钟，观察动物恢复情况。

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266.2）复制模型（急性不全窒息）用止血钳夹闭橡皮管管腔2/3并持续2分钟，观察呼吸、血压变化并记录。松开止血钳5分钟，观察动物恢复情况。

276.3）复制模型（全窒息）用止血钳完全夹闭橡皮管管腔，观察呼吸、血压变化。待血压下降至60mmHg(或鼻翼扇动停止)时立即松开止血钳，进行抢救。

28实验步骤与观察：7）抢救：抢救指标：血压≤60mmHg或鼻翼停止扇动抢救方法：立即松开止血钳，施行胸廓按压。如恢复不良，耳源静脉注射药物:2.5ml尼可刹米＋8ml10%GS＋2ml去甲肾上腺素（缓慢推注，观察动物恢复后的呼吸、血压变化）

29实验步骤与观察：8）处死实验完成后，耳源静脉注射空气处死家兔（注意按压）

30注意事项：1.夹闭橡皮管家兔挣扎时注意保护颈动脉插管，防止滑脱。2.胸廓按压时快速均匀，用力适度，持续1分钟以上3.尼可刹米不可过量使用，以免发生抽搐。

31实验结束：1）清洗实验器械2）动物放回原处3）填写结果，实验报告

32血压变化趋势呼吸变化趋势实验前夹闭1/3夹闭2/3全夹闭恢复窒息实验中家兔的血压及呼吸变化

33呼气性呼吸困难呼气时阻塞加重中央性气道阻塞呼气时阻塞减轻吸气性呼吸困难吸气时阻塞加重胸外胸内吸气时阻塞减轻吸气时：气道内压<大气压，阻塞加重

34R∞1/r4=1/S24Kpa10Kpa,呼吸抑制一定程度的PaO2降低和PaCO2升高可以兴奋呼吸中枢、心血管中枢；严重的缺氧和二氧化碳潴留直接抑制呼吸、心血管中枢。