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时间:2021-04-17
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1、实验三单核苷酸多态性的检测二.实验原理1.SNPs的概念单核苷酸多态性(singlenucleotidepolymorphism,SNPs)是指在基因组水平上由于单个核苷酸位置上存在转换、颠换、插入、缺失等变异所引起的DNA序列多态性。在一个群体中,当基因组内特定核苷酸位置上存在两种不同核苷酸且出现频率大于1%(也有人提出2%)时,被视作SNP。由于这种界标数目极多,覆盖密度大,由此可以大大提高基因组作图和基因定位的精度。2.单核苷酸多态性检测与分析变性高效液相色谱(DHPLC):高效、快速、高
2、灵敏度、低成本、全自动化操作基于凝胶电泳的限制性片段长度多态性(RFLP)等位基因特异的寡核苷酸杂交(ASO)单链构象多态性(SSCP)分析以荧光共振能量传递为基础的Taqman法DNA芯片、质谱法、微测序法等。CEL1酶(环球基因公司,Transgenomics,Inc.)能识别单碱基错配,也被应用于SNP的检测。4.本实验原理本实验利用聚丙烯酰胺电泳,观察拟南芥不同生态型中某基因片段的SNP。根据测序结果,拟南芥不同生态型Ws和Col的At5g62130片段分子量大小相同,但存在单一位点的差
3、异,而这种差异用常规的琼脂糖凝胶电泳无法区分。在实验中,首先利用PCR扩增拟南芥At5g62130片段基因。然后对PCR产物进行变性和复性后,进行聚丙烯酰胺凝胶电泳分离。由于SNPs的存在,Ws、Col及Ws和Col杂交F1代中At5g62130扩增片段经变性和复性后,因其构象不同,故可根据其泳动速率的差异而加以区分。Fig. Typicalbandpatternsofduplexanalysismarkersofdifferentloci.Generationofco-dominantPCR-
4、basedmarkersbyduplexanalysisonhighresolutiongelsThePlantJournal1998,16(1):117三、实验材料与试剂1.拟南芥小苗:C0,Ws;2.CTAB提取缓冲液:100mMTris-Cl(pH8.0),20mMEDTA(pH8.0),1.4MNaCl,2%(w/v)CTAB3.氯仿、异丙醇、75%乙醇,无菌水等;4.PCR引物、PCR反应试剂,包括PCRbuffer、dNTP、Taq酶等。5.14%聚丙烯酰胺凝胶、DNA上样缓冲液、D
5、NA分子量Marker、TBE电泳缓冲液、EB染色液等。四实验步骤采用CTAB法提取不同生态型(C0、WS)拟南芥基因组DNA。1)取1~2株小苗,加入50l预热CTAB提取液,在离心管中用玻棒磨成匀浆,再加入350lCTAB溶液,继续研磨。65ºC水浴0.5hr。2)冷却至室温后加入等体积氯仿400l,上下颠倒混匀,12000rpm,离心10min。吸取上清,移入另一管中。3)加入1ml预冷的无水乙醇,混匀后-20ºC放置15min。12000rpm,离心15min。4)倒去上清,沉淀用
6、1ml75%乙醇清洗,略离心后,小心倒去上清,将沉淀空干。5)用20lH2O或TE缓冲液溶解沉淀。2.PCR扩增拟南芥基因At5g62130片段。试剂加样量引物(10M)0.5l0.5lPCRbuffer2ldNTP(25mM)2lTaq0.2lddH2O13.8l模板1l共计20l模板为拟南芥不同生态型C0或Ws小苗的基因组DNA1lPCR反应程序:PCR产物长度为1057bp 。3.PCR产物的变性和复性:1.取PCR产物10l(Co)+10l(Ws),94ºC变
7、性5min,42ºC复性30min。2.14%聚丙烯酰胺电泳,200V,1hr,电泳缓冲液为0.5×TBE。3.电泳完毕后,凝胶用0.5g/mlEB的TBE溶液进行染色15min,在紫外灯下观察条带。4.拍摄电泳结果,标明每个泳道的样品,简要说明形成这些条带差异的原因。5.思考题:简述SNP检测在反向遗传学研究中的应用。1057bp食管癌诊治进展:2014定义食管癌规范化诊治指南,卫生部,2011(适用于地市级、县级)食管癌—下咽到食管胃结合部之间食管上皮来源的癌。早期食管癌—局限于食管粘膜和
8、粘膜下层的肿瘤,不伴淋巴结转移,包括原位癌、粘膜内癌和粘膜下癌。Barrett食管—食管下段的复层鳞状上皮被单层柱状上皮所代替。癌前疾病—慢性食管炎、Barrett食管炎、食管白斑症、食管憩室、食管失弛缓症、返流性食管炎和食管良性狭窄。癌前病变—鳞状上皮不典型增生,包括轻度、中度和重度不典型增生。食管小细胞癌:特殊生物学行为、组织来源及治疗方法等不同于食管鳞癌、腺癌。与肺小细胞癌相似:恶性程度高、早期发生转移、预后差,长期生存率低。约一半的患者在就诊时已有远处转移,尸检发现肝脏转移率高达90%,
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