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时间:2018-01-04
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1、一、试剂配制1、RIPA裂解体系:150mmoL/LNaCl;1.0%NP-40或Triton-x-100;0.5%脱氧胆酸钠;0.1%SDS;50mmoL/LTris(ph8.0)2、蛋白电泳上样缓冲液(5×):0.5MTris-HCl(pH6.8)2.5ml;甘油5ml;10%SDS4ml;1%溴酚蓝0.4ml;双蒸水7.1ml;混匀后950ul/管分装,-20度储存。用前加50ulβ-巯基乙醇/管。3、1.5MTris-HCl(pH8.8):配制150ml,4度储存。称取27.23gTrisbase溶于80ml双蒸水中,慢慢加浓盐酸调节pH至8.8(约
2、5ml),加双蒸水定容至150ml。4、1MTris-HCl(pH6.8):配制100ml,4度储存。称取12.14gTrisbase溶于60ml双蒸水中,慢慢加浓盐酸调节pH至6.8(约3ml),加双蒸水定容至100ml。5、0.5MTris-HCl(pH6.8):配制100ml,4度储存。称取6gTrisbase溶于60ml双蒸水中,慢慢加浓盐酸调节pH至6.8(约3ml),加双蒸水定容至100ml。6、10%SDS(w/v):配制100ml,室温放置。称取10gSDS溶于80ml双蒸水中,最后定容至100ml。7、10%过硫酸铵(APS):配制10ml
3、,-20度储存。称取1gAPS溶于8ml双蒸水中,最后定容至10ml。1ml/管分装保存。备注:10%过硫酸铵最好现配现用,配好的溶液在4度可保存2周左右,过期会失去催化作用。8、蛋白电泳缓冲液(5×):Tris15g+甘氨酸94g+SDS5g+H2O至1L,临用时稀释5倍至1×SDS电泳缓冲液加入电泳槽中。注意:加水时要让水沿着壁缓慢流下,以避免由于SDS的原因产生许多泡沫。9、转印缓冲液(5×):Tris15g+甘氨酸72g加水定容到1000ml,一般不需调节PH值,用时稀释5倍到1×转印缓冲液。如果采用PVDF膜或NC膜加20%甲醇。10、漂洗液(PB
4、S-T):取一包PBS粉剂配置成2L的溶液,然后加入0.05%或者0.1%Tween-20即可。11、封闭液:5%的脱脂牛奶粉PBS-T12、抗体稀释液:含5%BSAPBST溶液。二、WesternBlotting基本操作步骤1、蛋白样品的制备(培养细胞蛋白样品的制备)(1)收集细胞,用PBS洗两遍(300g;5min)后,视细胞量加入一定体积的RIPA裂解液,冰上裂解40min。(2)最大转速,4℃离心10min,收集裂解上清。转移到新的1.5mlEP管中。(3)测定蛋白浓度:选用Braford蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度Bradford法:检测原理:Bra
5、dford与蛋白质四级结构,特殊氨基酸结合,由棕色变成蓝色,595nm检测.该方法用于大多数蛋白质的定量是比较精确的,但不使用于小分子碱性多肽的定量,如核糖核酸酶或溶菌酶,去污剂的浓度超过0.2%影响测定结果,如TritonX-100,SDS,NP-40等.(4)在收集的上清中加入适量的蛋白上样buffer,沸水中煮5min。(5)将煮过的蛋白样品在最大转速,4℃条件下离心10min。(6)收集离心上清于新的1.5mlEP管中,并按60ug/管分装到PCR管中。制备好的蛋白样品置于-80℃保存,可延缓蛋白降解。2、SDS-PAGE胶的制备(1)洗板,烘干。(
6、2)将玻璃板架到制胶架上。(3)配制合适浓度的分离胶(下层胶)。备注:视蛋白分子量大小选择相应浓度的分离胶。不同浓度SDS-PAGE胶的配方见下图:(4)将配制好的分离胶加入两块玻璃板之间,加入量距上层边缘1cm-1.5cm左右(加入玻璃板的2/3左右)。上层添加异丙醇以压平液面和封胶。备注:一般一块凝胶需要配制分离胶5ml。(5)静置30min后,弃掉上层的异丙醇,并用自来水冲洗玻璃板,进一步清除异丙醇,最后用吸水纸将残留的自来水吸干。(6)准备梳齿,配制上层胶(浓缩胶)。备注:一般一块凝胶需要配制浓缩胶1-1.5ml。(7)将配制好的浓缩胶加到分离胶的上
7、面,加满玻片层,然后插入梳齿,注意不要有气泡。(8)静置30-40min,待凝胶完全凝集后便可上样电泳。3、上样电泳一般我们蛋白的上样量为60ug/孔。上样电泳时注意设置阳性对照和阴性对照。注意加样时间要尽量短,以免样品扩散,为避免边缘效应,可在未加样的孔中加入等量的样品缓冲液。电泳电压一般是80V跑半小时(以便蛋白在浓缩胶中缓慢浓缩),然后120V跑1h左右。观察样品跑的状态,一般称一条水平直线为好。视marker跑的状态,一般所要的蛋白对应的分子量跑至距凝胶上方2/3处即可停止电泳。4、转膜说明:一般在跑电泳时就将膜和滤纸准备好,泡于转膜缓冲液中了。在我
8、们的实验中,均是使用PVDF膜。将PVDF膜先在甲醇
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