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时间:2020-02-04
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1、SDS-PAGE测定酶目录一、实训目的二、实训原理三、实训材料四、实训步骤一、实训目的掌握SDS-PAGE电泳技术的原理、凝胶配制等知识能够熟练进行加样能够正确使用电泳仪二、实训原理1.SDS-PAGE分离样品的主要依据是各种物质分子量的差异性。当SDS与各种酶分子结合后,酶分子即带有大量的负电荷,并远远超过了其原来的电荷。因此在电泳时,电泳迁移仅取决于分子量大小而与其所带的电荷无关。三、实训材料1.试剂30%丙烯酰胺溶液(Acrylamide-Bis)配置100mL:29克丙烯酰胺,1克甲叉双丙烯酰胺,置于25
2、0mL烧杯中,向烧杯中加入约80mL的去离子水,充分搅拌溶解,最后定溶100mL,置于棕色瓶4℃保存。0.5moL/L浓缩胶缓冲液配置100mL:6.0克Tris,置于100mL烧杯中,加80mL去离子水搅拌溶解;用HCl调节pH值到6.8,加水混匀定容至100mL。1.5moL/L分离胶缓冲液配置100mL:18.2克Tris、置于100mL烧杯中,加80mL去离子水搅拌溶解;用HCl调节pH值到8.8,加水混匀定容至100mL。5xTris-甘氨酸电极缓冲液组分浓度0.125moL/LTris,1.25moL
3、/LGlycine,0.5%(m/v)SDS;配置1L:15.1克Tris,94克甘氨酸、5克SDS,加水混匀定容至1L,室温保存10%(m/v)过硫酸铵配置10mL:1克过硫酸铵溶于l0ml蒸馏水中,临用前配制。10%(m/v)SDS配置10mL:配置方法同过硫酸铵2x样品处理液组分100mmol/LTris-HCl(Ph6.8),4%(m/v)SDS,0.2%(m/v)溴酚兰,20%(体积倍数)甘油,2%(m/v)β-巯基乙醇;配置量5mL:取1mol/LTris-HCl(Ph6.8)0.5mL,SDS0.2
4、g,溴酚蓝10mg,甘油1mL,加水溶解定溶至5mL。小份分装,0.5mL一管,室温保存。使用前将25μL的β-巯基乙醇加入混匀考马斯亮蓝染色液配置量1000mL:称取0.125%考马斯亮兰R-2501.25g,250mL甲醇或乙醇,80mL乙酸,加蒸馏水补足1000mL。充分混匀后进行过滤,收集滤液备用。脱色液7%醋酸蛋白质样品46kda的酶其他试剂15g/L琼脂糖溶液(封胶用)(用1xTris-甘氨酸电极缓冲液配置)2.仪器1.电泳仪2.电泳槽及灌胶模具3.电炉4.微量移液器5.烧杯、量筒、摇床等四、实训步骤
5、1.准备工作将垂直板型电泳装置的玻璃片洗干净,晾干,嵌入凹槽中,夹好。将电泳槽、凝胶模子串成一体的垂直板型电泳装置,垂直放置在水平台面上。2.分离胶的制备按比例取试剂立即混匀,将混合液,迅速在电泳槽的两玻璃板之间灌注,留出灌注浓缩胶所需空间(梳子的齿长再加0.5~1cm)。用滴管小心地在溶液上覆盖一层蒸馏水,以隔绝空气中的氧气,并使胶面平整。将电泳槽垂直静置于室温约1h或更长,待分离胶聚合完全后(水封层和凝胶面之间会出现明显的水胶分界线),倾出覆盖的水,再用滤纸吸净残留水(注意勿将滤纸碰到胶面)。准备灌注浓缩胶。
6、3.浓缩胶的制备在聚合的分离胶上直接灌注浓缩胶,立即在浓缩胶溶液中插入干净的梳子,梳底距离分离胶至少有0.5~1cm。4.样品的处理在待测酶样品中按1:1体积比加入2倍样品处理液,在100℃沸水中加热3~5min以使酶变性。另外选择相对分子量大小合适的标准蛋白质作为参照,并做同样处理。5.加样待浓缩胶完全聚合后,小心移出梳齿,用电极缓冲液洗涤加样孔数次,然后将凝胶固定于电泳装置上,槽中加入Tris-甘氨酸电极缓冲溶液。必须设法排出凝胶底部两玻璃板之间的气泡。用微量注射器向凝胶梳孔内加样,动作轻缓、准确、迅速,防止
7、窜孔。6.电泳接上电泳仪,上电极接电源的负极,下电极接电源的正极。电泳时,调节电流至20~30mA并保持电流强度恒定。待蓝色的溴酚蓝条带迁移至距离凝胶下端约1cm时,关闭电源停止电泳。7.剥胶电泳结束后小心从电泳装置上卸下玻璃板,将胶取出,注意凝胶的完整性。8.染色和脱色经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离的酶样品可用考马斯亮蓝R250染色。将凝胶完全浸入固定染色液中放摇床上,轻轻摇动使染色均匀,染色1~2h或过夜,至显出条带。染液收回,用水洗去凝胶表面染液,加脱色液脱色,需3~10小时,期间更换多次洗色液至背景无色
8、。9.凝胶保存可用7%醋酸或20%甘油保存,也可拍照、扫描或脱水制成干胶保存。10、相对分子质量的计算10、相对分子质量的计算(1)电泳相对迁移率的计算用直尺分别量出标准蛋白质、待测酶区带中心以及溴酚蓝距分离胶顶端的距离,按以下公式计算相对迁移率:(2)标准曲线绘制以各标准蛋白样品的相对迁移率为横坐标,其相对分子质量(Mr)的对数值为纵坐标,在坐标纸上作图,可拟合绘制一条
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