RNA引导性基因编辑.doc

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1、RNA引导性基因编辑Apr02,2013NoCommentsRNA引导性基因编辑。本示意图描绘了Cas9(绿色)对CCR5基因上一个靶位点的切割过程。该过程由嵌合型向导RNA(chimericguideRNA.)介导。图片取自《自然-生物技术》(NatureBiotechnology)。 在细菌、斑马鱼与哺乳动物细胞内,可编程RNA(programmableRNA)能够引导靶向性基因修饰(targetedgenemodification)。长久以来,低等生物(即原核生物与病毒)一直都是深受生物学家们欢迎的生物工具。毕竟,如果没有了限

2、制性内切酶(restrictionendonucleases)或DNA聚合酶(DNApolymerases),分子生物学领域(或者说,整个基因组学领域)又将何去何从呢?目前有大量文章报道了RNA引导性基因组工程(RNA-guidedgenomeengineering)研究,这些研究指出细菌在没有这些酶的情况下,仍能够继续存活下去。成簇的、规律间隔的短回文重复序列(clustered,regularlyinterspaced,shortpalindromicrepeats,CRISPR)系统是细菌与古细菌免疫系统的一个组成部分。CRI

3、SPR相关内切酶(CRISPR-associated,Cas)能够切断外源性的核酸,并能够由两种小分子RNA将其定向到其靶基因序列上。研究者们在去年发表的一项研究工作中指出,化脓性链球菌(Streptococcuspyogenes)的CRISPR-Cas系统(CRISPR-Cassystem)在体外能够用于指导对特定靶基因序列的切割。于是他们提出了这样一种可能,即这种方法可用于体内环境下的靶向性基因编辑(targetedgeneediting)。近期,研究者们以惊人的速度连续发表了五篇文章,证实了这种可能性的存在。哈佛大学医学院(H

4、arvardMedicalSchool)的GeorgeChurch研究团队、博德研究所(BroadInstitute)的FengZhang研究团队,以及韩国首尔国立大学(SeoulNationalUniversity)的Jin-SooKim研究团队详细描述了用不同的方法来研究本质上相同的主题——即化脓性链球菌的Cas9核酸酶连同两种非编码性RNA,即CRISPRRNA(crRNA)与反式激活crRNA(trans-activatingcrRNA,tracrRNA一起,能够影响哺乳动物细胞内源性基因序列的切割过程。这两种RNA可以以嵌

5、合的形式同时进入细胞内,或者分别单独进入细胞;它们在被导入细胞之前,可能会在质粒内或在体外环境下进行转录。最重要的是,不管用什么研究方法,研究者们都需要通过将靶基因序列与20个碱基对组成的crRNA进行互补配对,从而特异性地标记出该靶基因序列。以NGG形式存在的、所谓的前间区序列邻近基序(protospaceradjacentmotif,PAM)紧随在20个碱基对长的靶序列后,其必要条件是靶基因序列的长度必须达到最小限度。锌指核酸酶(zinc-fingernucleases)与转录激活因子样效应物核酸酶(transcriptiona

6、ctivator–likeeffectornucleases,TALEN)为现在常用的生物工具;然而与这两种生物工具相比,如果用CRISPR-Cas系统来靶向于一段新的序列,就只需要设计出一种新的RNA向导(RNAguide)就可以了,而不需要设计两种新的酶。这些研究所报道的、CRISPR-Cas系统对哺乳动物基因的切割效率与TALEN的切割效率相当,甚至更胜一筹。Church的研究团队与Zhang的研究团队报道了切割位点上由于非同源末端连接修复(nonhomologousendjoining–basedrepair)机制所引起的遗

7、传突变,他们也报道了通过同源重组(homologousrecombination),将供体的基因序列转导入细胞中。Kim的研究团队采用有限稀释法(limitingdilution),而并未使用抗生素选择法(antibioticselection),从而获得了突变型克隆细胞系,这说明细胞对该系统的耐受性非常好。同样来自于哈佛大学医学院的KeithJoung等人组成的研究团队应用RNA引导性基因编辑(RNA-guidedediting)技术,使斑马鱼的内源性基因产生突变,从而使80%以上的靶位点出现突变。尽管他们报道称该方法不会对胚胎产

8、生显著的毒性效应,但是成鱼是否会出现不利表型,遗传变异是否能传递给下一代,这仍有待观察。通过基因编辑能够获得克隆细胞系,而且还不会使斑马鱼胚胎出现意想不到的毒性反应;这些事实都说明一个问题,即RNA引导性核酸酶(RNA-guidedn

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