HIS-TAG蛋白质的表达纯化.docx

《HIS-TAG蛋白质的表达纯化.docx》由会员上传分享，免费在线阅读，更多相关内容在教育资源-天天文库。

1、蛋白质的表达、分离、纯化实验的实验原理和操作步骤携带有目标蛋白基因的质粒在大肠杆菌BL21中，在37℃，IPTG诱导下，超量表达携带有6个连续组氨酸残基的重组氯霉素酰基转移酶蛋白，该蛋白可用一种通过共价偶连的次氨基三乙酸（NTA）使镍离子（Ni2+）固相化的层析介质加以提纯，实为金属熬合亲和层析（MCAC）。蛋白质的纯化程度可通过聚丙烯酰胺凝胶电泳进行分析。一、试剂准备 1. LB液体培养基：Trytone10g，yeastextract5g，NaCl10g，用蒸馏水配至1000mL。 2. 氨苄青霉素：100mg/mL。 3. 上样缓冲液

2、：100mMNaH2PO4，10mMTris，8MUrea，10mM 2-ME，pH8.0。 4. WashingBuffer：100mMNaH2PO4，10mMTris，8MUrea，pH6.3。 5. ElutionBuffer：100mMNaH2PO4，10mMTris，8MUrea，500mMImidazole，pH8.0。 6. IPTG：100mMIPTG（异丙基硫代-β-D-半乳糖苷）：2.38gIPTG溶于100mlddH2O中,0.22μm滤膜抽滤，-20℃保存。 二、获得目的基因 1. 通过PCR方法：以含目的基因的克隆

3、质粒为模板，按基因序列设计一对引物（在上游和下游引物分别引入不同的酶切位点），PCR循环获得所需基因片段。 2. 通过RT-PCR方法：用TRIzol法从细胞或组织中提取总RNA，以mRNA为模板，逆转录形成cDNA第一链，以逆转录产物为模板进行PCR循环获得产物。 三、构建重组表达载体 1. 载体酶切：将表达质粒用限制性内切酶（同引物的酶切位点）进行双酶切，酶切产物行琼脂糖电泳后，用胶回收Kit或冻融法回收载体大片段。 2. PCR产物双酶切后回收，在T4DNA连接酶作用下连接入载体。 四、获得含重组表达质粒的表达菌种 1. 将连接产物转

4、化大肠杆菌DH5α，根据重组载体的标志（抗Amp或蓝白斑）作筛选，挑取单斑，碱裂解法小量抽提质粒，双酶切初步鉴定。 2. 测序验证目的基因的插入方向及阅读框架均正确,进入下步操作。否则应筛选更多克隆，重复亚克隆或亚克隆至不同酶切位点。 3. 以此重组质粒DNA转化表达宿主菌的感受态细胞。 五、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的诱导 1. 接种含有重组氯霉素酰基转移酶蛋白的大肠杆菌BL21菌株于5mLLB液体培养基中（含100ug/mL氨苄青霉素），37℃震荡培养过夜。 2. 按1∶50或1：100的比例稀释过夜菌，一般转接1mL过夜培养物于100m

5、L（含100ug/mL氨苄青霉素）LB液体培养基中，37℃震荡培养至OD600 =0.6-0.8（最好0.6，大约需3h）。取10ul样品用于SDS-PAGE分析。 3. 对照组不加诱导剂，实验组加入IPTG至终浓度0.5mmol/l，37℃继续培养1-3h。 4. 12000rpm离心10min，弃上清，菌体沉淀保存于-20℃或-70℃冰箱中。 六、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的分离、纯化 1. NTA层析柱的准备：在层析柱中加入1mLNTA介质，并分别用8mL去离子水，8mL上样缓冲液洗涤。 2. 重组蛋白的变性裂解：在冰浴中冻融菌体沉淀，

6、加入5mL上样缓冲液，用吸管抽吸重悬，超声波破裂菌体，用振荡器等轻柔的混匀样品60min，4℃12000rpm离心30min，将上清吸至一个干净的容器中，并弃沉淀。取10ul上清样品用于SDS-PAGE分析。 3. 上清样品以10-15mL/h流速上Ni2+-NTA柱，收集流出液，取10ul样品用于SDS-PAGE分析。 4. 洗脱杂蛋白：用WashingBuffer以10-15mL/h流速洗柱，直至OD280 =0.01分步收集洗脱液，约3-4h，取10ul洗脱开始时的样品用于SDS-PAGE分析。 5. 洗脱目标蛋白：用ElutionB

7、uffer洗柱，收集每1mL级分，分别取10ul样品用于SDS-PAGE分析。