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时间:2020-09-03
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1、骨细胞的培养及其操作原代培养:密度梯度离心法:1.取鼠龄2个月,体重70-120g的白鼠2只2.将白鼠颈椎脱臼处死,浸入盛有300—500ml 75%酒精的1000ml烧杯中浸泡5min3.用镊子取出后用脱脂棉擦掉多余酒精,置于培养皿内,用手术剪剪开大腿内侧皮肤和肌肉,分离出股骨和胫骨,沿肌肉白线处清除其周围的肌肉,在培养皿中用5-10ml75%酒精浸泡5min后移入超净工作台;4.用镊子夹住大鼠股骨和胫骨放置于无菌的培养皿上方,依次用3-5mlPBS和无血清的培养基冲洗2-3次后,移入另一无菌培养基中,用镊子和骨钳固定股骨,分别用10
2、ml注射器在骨两端钻孔。5.用5ml注射器吸取培养基从骨一端孔处插入,从上至下缓慢冲洗骨髓腔,用下方的无菌培养皿收集骨髓悬液,重复此过程2-3次。6.在15ml离心管中加入15mlFicoll分离液,再将骨髓悬液沿管壁缓缓加入其上,注意一定要轻缓,不能让骨髓悬液与分离液相混合,调整骨髓悬液与分离液的体积比为2:1.7.将离心管以2000rml离心20min离心后管内物质分为3层,用吸管小心吸取中间的白膜层置于一个新的离心管内;8.在此离心管中加5ml培养基,吹打成单细胞悬液,1000rml离心5min,离心后用吸管吸取上清液并去掉,完全
3、培养基,并轻轻吹散细胞10-20次,制成细胞悬液。以5*10^6cell/ml的细胞密度接种于T25培养瓶中(培养瓶中培养基终体积为5ml),置于CO2培养箱中培养,48小时后用吸管吸出全部培养液并去掉,添加新鲜培养液,以后每隔三天全量换液一次。全骨髓培养法1)-5)同“密度梯度离心法”;6)在15ml离心管中3ml培养基,再将骨髓悬液用吸管沿管壁缓缓加入其中;7)将离心管以1000rpm离心5min,离心后用吸管吸取上清液并去掉,加入完全培养基轻轻吹散细胞10-20次,制成细胞悬液。8)以5*10^6cell/ml的细胞密度接种于T2
4、5培养瓶中(培养瓶中培养基终体积为5ml),置于CO2培养箱中培养,48h后用吸管吸出约一半培养液(约2.5ml)并去掉,添加2.5ml新培养液,以后每隔三天全量换液一次。传代培养1)在超净工作台内用吸管吸取T25培养瓶的旧培养液,加入3-5毫升PBS冲洗2-3次,吸去PBS然后加入1ml消化液(0.125%胰蛋白酶+0.02%EDTA);2)倒置显微镜下观察贴壁细胞形态变化,当贴壁的剑充值细胞质回缩,细胞间隙不断增大,细胞呈近球形同时有少量圆形细胞脱壁时(37℃下整个消化过程大约需3-5min),立即加入2ml(两倍消化液体积)完全培
5、养基(含10%FBS的DMEM)终止消化。3)用吸管反复有序轻轻吹打瓶壁上的细胞,使细胞脱离瓶壁后成单细胞悬液,显微镜下观察细胞全部脱落后,将单细胞悬液用吸管移至15ml离心管中,1000rpm离心5min。1)离心后,用吸管吸取上清液后去掉,加入适量培养液,轻轻吹打细胞10-20次按1:2传代培养,每三天换液一次。2)显微镜下逐日观察传代培养的细胞,带贴壁细胞达到90%以上融合时,再进行传代操作,如此反复。冷冻步骤1)按传代方法将消化好的细胞离心(1000rpm,5min),吸管吸取上清后去掉,加缓慢加入配置好的冻存液。2)用吸管轻轻
6、吹打10-20次制成单细胞悬液,分装入冻存管中,调节冻存管中细胞的终密度为10^6-10^7cells/ml,每管细胞悬液体积为1-1.5ml;3)冻存管预先用记号笔做好标记,包括细胞名称,细胞代数,冻存日期,操作人;4)先将东村官放入4℃冰箱中15-20min,然后转移至异丙醇冻存盒内置于 -80℃冰箱中过夜,然后将冻存管移入液氮罐中保存。冻存液:5%DMSO+95%培养基复苏步骤1)从液氮中取出冻存管,迅速放入37℃水浴,不断摇动1-2min使其尽快融化2)用酒精棉球擦洗冻存管以减少污染;3)预先在15ml离心管中加入5ml预热的培
7、养基,吸出冻存管中的细胞悬液,注入离心管中,离心(100rpm,5min)4)用吸管吸取上清液后去掉,加入5ml新鲜培养液吹打10-20次制成单细胞悬液;5)接种至T25培养瓶中6)放入培养箱中培养
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