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1、安徽农业科学,2001,29(1):96-97,105JournalofAnhuiAgriculturalSciences不同培养基对辣椒疫霉致病力的影响1)1)1)2)2)戚仁德丁建成顾江涛高智谋岳永德(1)安徽省农业科学院植保研究所,合肥230031;2)安徽农业大学植保系)摘要辣椒疫霉的菌落形态、生长速率、产生孢子囊的能力、致病力的强弱与培养基种类有很大关系。其中在燕麦片培养基上生长最快,致病力也最强,但致病力的强弱与菌丝生长速率没有关系;菌株在同一培养基(营养条件)下生活一定时间后,其致病力强弱发生了分化,认为营养条件是影响辣椒疫霉
2、致病力分化的因素之一。关键词辣椒疫霉;培养基;致病力;生长速率EffectsofMediaonPathogenicityofPhytophtooraCapsiciQiRendeetal(PlantProtectionInstitute,AAAS,Hefei230031)AbstractMediumhadrelationtobiologicalcharactersincludingcolonymorphology,growthrate,sporangiumproductionandpathogenicityofPhytophthoracaps
3、iciLeonian.TheresultsshowedthattheisolattegrowthonOMAmediumhadgreatergrowthrateandstrongervirulence,butthevirulencehadnorelationtogrowthrate.IftheisolateofP.capsiciwereculturedonsamemediaforalongperiod,thepathogenicityoftheisolatiewoulddifferentiate.Theresultsalsoshowedtha
4、tnutritionwasoneofthefactorsconductingtopathogenicitydifferentiation.KeywordsPhytophthoracapsici,Pathogenicity,Growthrate,Medium关于培养基、pH值和温度对辣椒疫霉菌落形态、孢子1.3.4玉米粉培养基(CMA)。玉米粉300g,水1000ml,囊产生及菌丝生长速率等生物学性状的影响已有一些报洋菜20g。配制方法同燕麦培养基。[1~3]道,但关于辣椒疫霉长时间在同一营养条件下生长将上述各培养基在121e下高压蒸汽灭菌2
5、0min。后,对寄主的致病性是否会发生变化尚未见有报道。作1.3.5选择性培养基。上述培养基高压灭菌后,在温度者通过测定辣椒疫霉在不同培养基上培养不同时间段后降至50~60e时,按每100ml培养基分别加入青霉素的致病力,来研究培养基对辣椒疫霉致病力的影响,旨在5mg、链霉素3mg、多菌灵5mg等药剂,摇匀,倒成平板。探寻影响辣椒疫霉致病力发生分化的因素。1.4菌丝生长速率的测定1材料与方法将采集的新鲜辣椒疫病组织表面用自来水冲洗干1.1供试菌株净,稍凉干。然后将病健交界处的病组织切成2mm@2mm辣椒疫霉菌株HX-1系从和县城南镇的大棚辣
6、椒疫大小,置于选择性培养基表面,在25e、黑暗条件下培养病组织上分离得到的。4d后,沿菌落边缘移出菌丝块,鉴定为辣椒疫霉后转移至1.2供试辣椒供试培养基培养上进行纯化;纯化后移入同种培养基上供试辣椒品种为皖椒1号,在温室内分期育苗,4叶培养。观察供试菌株在不同培养基上的菌落形态,镜检时移栽至盆钵,每盆3株,苗龄6~8片叶时接种。孢子囊的产生情况。1.3培养基供试菌株在上述培养基上生长3d后,用打孔器(内径1.3.1胡萝卜培养基(CA)。将200g新鲜胡萝卜切成小4mm)沿菌落边缘切取菌丝块,移至上述各培养基平板中片,加纯净水500ml,捣碎
7、,用双层纱布过滤去渣,补水至央,每皿1块,重复3次。培养皿直径为9cm,每皿倒14ml1000ml,再加入琼脂20g,煮沸5min。培养基。接种后将培养皿放在25e、黑暗中培养,4d后测1.3.2燕麦培养基(OMA)。燕麦片30g,加水100ml,在量菌落直径,求出生长速率[菌丝生长速率(mm/d)=(菌落直径-4)/(2@4)]。60e下水浴1h,用双层纱布过滤、去渣。取上清液补足水1.5致病性的测定至1000ml,加入琼脂20g,煮沸,等琼脂溶化后分装。将纯化后的HX-1菌株在不同培养基上培养,培养1.3.3菜豆培养基(BA)。称取菜豆
8、(花豆)60g,加水5d后,一部分用于测定致病力,另一部分继续培养,且每1000ml,在60e下水浴1h,然后用双层纱布过滤、去渣。10d转移1次,并分别用第1次、第6次、第8次
