微生物标本采集.ppt

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1、临床微生物标本规范化采集和送检中国专家共识中华预防医学会医院感染控制分会2017年1月01微生物标本采集的基本原则020304目录微生物标本运送的基本原则微生物实验室对标本的拒收标准微生物标本采集及注意事项一、微生物标本采集的基本原则在抗菌药物使用前采集标本。2.无菌部位的标本更具有临床价值，有菌部位采集的标本需要清除正常菌群和定植细菌才有意义。尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致标本的污染”。3.标本的标签和申请单信息要完整。对于每一份标本，实验室都需要了解该患者和标本的详细信息以及医生的送检目的。4.严格无菌操作。应严格执行无菌操作，避免标本被污染。

2、盛放标本的容器须经灭菌处理。采集无菌标本时应注意对局部及周围皮肤的消毒。如使用消毒液消毒皮肤，须作用一定时间，待其干燥后采样。二、生物标本运送的基本原则1.所有标本采集后都应尽快送往实验室，多数标本应在2小时内送达。有些样本量小的标本应在采样后15-30分钟内送达。2.保证必要的运送条件：不同种类的标本因检测的目标致病微生物不同，对标本保存和运送的环境条件有不同的要求（详见附表）。对温度敏感的细菌如脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌和流感嗜血杆菌等应保温并立即送检。二、生物标本运送的基本原则三、微生物实验室对标本的拒收标准标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时间，

3、或保存的温度不当。标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下送检。容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容器非无菌等。未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检前列腺标本。标本明显被污染，如痰标本中混有食物残渣等。三、微生物实验室对标本的拒收标准拭子上的标本已经干涸。标本不符合检验要求，如痰标本以唾液为主。标本使用了固定剂或防腐剂。标本量太少。一支拭子要求检验项目太多。24小时内重复送检的标本（血培养除外）。四、标本采集—血培养一、临床采样指征：菌血症：T:≥38℃或≤36℃，或寒战；WBC计数>

4、10.0×109/L，中性粒增多，或者<3.0×109/L；有皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭、休克等全身感染症状体征，具备其中之一且不能排除细菌、真菌血流感染者。感染性心内膜炎：凡原因未明的发热，持续在1周以上，伴有心脏杂音或心脏超声发现赘生物，或原有心脏基础疾病、人工心脏瓣膜植入患者，均应多次进行血培养检测。导管相关血流感染：带有导管>1天或者拔除导管<48小时，出现T:>38℃、寒颤或低血压等全身感染表现，不能除外由血管内导管引起感染可能的，应多次进行血培养检测。四、标本采集—血培养二、标本采集：1.菌血症：采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；

5、使用抗菌药物治疗前采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导管常伴有定植菌存在。采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。避免

6、采血管内空气注入厌氧血培养瓶。四、标本采集—血培养二、标本采集：2.感染性心内膜炎建议在经验用药前30分钟内在不同部位采集2-3套外周静脉血培养标本。如果24小时内3套血培养标本均为阴性，建议再采集3套血培养标本送检。怀疑左心心内膜炎时，采集动脉血提高血培养阳性率。3.导管相关血流感染：分为保留导管和不保留导管两种情况。保留导管：分别从外周静脉和导管内各采取1套血培养标本，在培养瓶上标注采集部位，送往微生物实验室，同时进行上机培养。2套血培养检出同种细菌，且来自导管的血培养标本报阳时间比来自外周的血培养标本报阳时间早2小时以上，可诊断导管相关血流感染。不保留导管：

7、在外周静脉采集2套血培养标本。同时，通过无菌操作剪取已拔出的导管尖端5cm，在血平板上交叉滚动4次进行送检。或采用超声震荡法留取菌液接种。从导管尖端和外周血培养培养出同种同源细菌，且导管尖端血平皿的菌落计数超过15CFU有意义。四、标本采集—血培养三、标签和申请单：每套血培养瓶上标签应有唯一标识号或条码，并注明标本采集时间和部位。如疑似感染性心内膜炎或疑似导管相关血流感染患者的标本，申请单除应包括患者基本信息外，一定要注明疑似诊断。四、标本运输：采集后立即送检，2h内送达实验室。不能及时送检应置室温暂存。禁止冰箱存放。运送的装置要足够安全，避免血培养瓶的运送过程中

8、因碰撞发和