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时间:2019-11-25
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1、免疫共沉淀与WesternBlot实验步骤:1.以60mm细胞培养皿为例,细胞转染后24-36小时后,吸净培养液(可用PBS小心漂洗一次)。2.加入500μl预冷的1×lysisbuffer,于4℃或冰上放置裂解细胞5分钟。3.将细胞裂解液转移到1.5mleppondorf管内,于冷冻离心机4℃,13000g离心30分钟。4.将离心后的上清液分为两份:一份35μl,加入等体积的2×SDSsamplebuffer,混匀后于100℃煮10分钟,做为总细胞裂解液(totalcelllysate,TCL)于-20℃保存,或取6-10μl进行SDS-PA
2、GE电泳,Westernblot检测目的蛋白的表达水平(接第5步)。另一份用于免疫沉淀,具体操作如下:1)分A/Gbeads:按每管(一个免疫沉淀样品)加入5μlAgroseA/Gbeads及5μl(1μg)抗体计算一次实验所用beads及抗体的总量,将抗体和beads混合,补充lysisbuffer(补充的lysisbuffer的量能使每管能均匀分配到50μlbeads及抗体的混合物),将beads及抗体的混合物按每管50μ(l含5μlbeads及5μl抗体)分配到1.5mlEppendorf管中,再加入400μl1×lysisbuffer,
3、备用;2)从步骤4中另一份用于免疫沉淀的上清液中取400μl加入到上一步(步骤1))已分好的beads中,使终体积达到850μl,将管子固定到混匀器上使混匀器匀速旋转(15rpm)免疫沉淀3小时;3)将免疫沉淀后的溶液于4℃3000rpm离心3分钟,去上清,加入500μl1×lysisbuffer洗涤beads,于冷冻离心机4℃3000rpm离心3分钟,弃上清,共洗涤三次。4)最后一次洗涤完毕,弃上清,管中只剩Beads,加入35μl1×lysisbuffer与等体积2×SDSsamplebuffer混合,于100℃煮沸10分钟,稍离心后取10
4、μl左右上样到PAGE胶,进行电泳,或-20℃冻存。5.电泳完毕,取下PAGE胶,与PVDF膜做成"三明治"形状,用湿转法进行电转1小时。6.电转完毕,取下PVDF膜,加入5%脱脂奶粉,于脱色摇床摇荡(75rpm)封闭1小时以消除非特异背景。7.封闭完毕,用TBST洗掉牛奶,加入一抗,于脱色摇床摇荡孵育(75rpm)1小时,使一抗与特异蛋白结合。8.回收一抗,用TBST洗3次(75rpm),每次5-10分钟。9.加入二抗,于脱色摇床孵育1小时,使二抗与一抗结合。10.用TBST洗3次,每次5-10分钟。11.将ECLA液和ECLB液各1ml,混
5、匀,放入二抗孵育后的PVDF膜30秒,将PVDF膜平铺于曝光盒中,进暗房,用医学X光胶片曝光。12.经过显影、定影后的胶片,于室温下自然风干或烘干,描画蛋白marker便于分析。注:如只做WesternBlot,跳过步骤4即可。实验试剂:1.PBS:NaCl20mM,KCL2.68mM,Na2HPO410mM,KH2PO41.76mM(pH7.4),室温保存。2.1×lysisbuffer:Tris-HCl20mmol/L(pH7.5),NaCl150mM,EDTA1mM,EGTA1mM,TritonX-1001%,Sodiumpyrophos
6、phate2.5mM,β-Glycerrophosphate1mM,NaVO41mM,Leupeptin1ug/ml,-20℃保存。(稀释成1×lysisbuffer后加入1mMPMSF)3.2×SDSsamplebuffer:Tris-Cl(pH6.8)125mM,SDS4%,甘油20%,DTT100mM,溴酚兰0.02%,室温保存。4.分离胶(下层胶)(10%SDS-PAGE)15ml:30%丙烯酰胺5ml,10×lowerbuffer(pH8.8)1.5ml,H2O8.5ml,10%AP15μl,TEMED15μl。5.10×lowerb
7、uffer(pH8.8)100ml:42.25gTrisbase,10ml10%SDS,室温保存。6.压缩胶(上层胶)(4%SDS-PAGE)5ml:30%丙烯酰胺0.65ml,4×stackingbuffer(pH6.8)1.25ml,H2O3.05ml,10%AP5μl,TEMED5μl。7.4×stackingbuffer(pH6.8)100ml:6.06Trisbase,4ml10%SDS,室温保存。8.电泳缓冲液:Trisbase0.125M,甘氨酸0.96mM,SDS0.5%,室温保存。9.电转缓冲液:Tris25mM,甘氨酸0.2
8、mM,甲醇10%,室温保存。10.10×TBS(pH7.6):Trisbase2.42%,NaCl8%,室温保存。11.TBST:1×TBS,Twee
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