机能实验：失血性休克

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1、实验失血性休克前言：这次实验课的内容是休克。首先，我们来简单复习一下休克的基本内容。首先要知道什麽是休克？休克就是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。我们今天实验课复制的家兔休克模型是属于失血性休克。休克发生的机制是什麽呢？目前公认的是微循环障碍学说，根据休克过程中微循环的改变，把休克分为三期：休克早期（微循环缺血期、缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期、淤血性缺氧期）；休克晚期（DIC或多器官功能衰竭）。同学们在实验

2、过程中要思考一下我们复制的休克模型处在哪一期？除了观察血压以外，你能不能提出一些观测的指标，来说明家兔处在休克的哪一期？不管是哪一种类型的休克，到了休克期，都存在有效循环血容量的严重不足和微循环功能的障碍，而且这两者可以相互促进，形成恶性循环。所以在抢救休克时，首先要扩充血容量，在此基础上改善微循环的状态。主要措施包括：充分补充血容量和适当选用血管活性药物。在这次实验里，扩容的方法是：回输血液和生理盐水；观察了两种血管活性药物：多巴胺（普萘洛尔）和阿拉明（间羟胺）。同学们回忆一下这两种药物各自属于

3、哪一类的受体激动剂，用于抢救休克的机理是什麽？实验目的：1.学会复制失血性休克的模型；2.了解抢救休克时扩容及应用血管活性药物的意义。实验步骤：1.称重：2.固定：背位交叉固定先用塑料绳系4个活扣，分别套在家兔的四肢上，上肢套在腕关节以上，下肢套在踝关节以上。2个同学，1个抓住两上肢，1个抓住两下肢，把兔子翻过来，使它腹面朝上，先把下肢固定在兔台底端的金属框上，再把捆绑两前肢的塑料绳在背位交叉后分别压住对侧的前肢，然后固定在兔台两侧的金属框上，最后用兔头固定器固定头部，适当调整一下固定器的高度，使

4、家兔的颈部保持平直，有利于手术操作。以下步骤中，3、4、5步是同时进行的。3.剪毛：手术部位是颈部和一侧腹股沟，把这两个部位的毛剪干净。剪毛的时候，用左手把皮肤绷紧，右手用粗剪刀贴近皮肤剪毛。4.麻醉：局麻，局麻药用1%的普鲁卡因，3ml左右皮下注射，水平方向进针，边进针边打药，注意不要把普鲁卡因打到肌肉或血管里。颈部是沿着正中线进行麻醉，腹股沟部位沿着股动脉走行的方向进行麻醉。怎麽来分辨股动脉的走行方向呢？先在腹股沟内1/3与外2/3交点处摸到股动脉的搏动，再向下触摸股动脉的搏动。5.分离血管：

5、①颈总动脉--监测血压。颈部做长4-6cm的皮肤切口，逐层钝性分离皮下组织，暴露出气管，分离气管，翻开肌肉层，就可以看到颈总动脉，它被包在血管神经鞘里，颈总动脉的特点是搏动明显、粉红色、壁韧，很容易分辨。把颈总动脉小心分离出来，尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。②股动脉--放血，复制休克模型沿股动脉走行的方向做3-4cm长的皮肤切口，钝性分离皮下组织，可以看到由外而内依次是股神经、股动脉和股静脉，股动脉常常被股神经和股静脉遮住。把股动脉同股神经、股静脉分离开，尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。

6、③颈外静脉--输血输液，作为抢救的通路颈外静脉位于颈部两侧皮下，很容易分辨。它的特点是壁薄，粗大，色暗，没有明显的搏动，钝性分离，尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。6.肝素化：从耳缘静脉注射肝素2.5ml/kg。7.插管：动脉插管：插管的时候三通管要关闭，颈总动脉插管提前用生理盐水充满。注意一定只有在形成动脉盲管以后才能进行动脉插管。结扎远心端，动脉夹夹闭近心端，用眼科剪在靠近远心端处剪开一个"V"形斜口，动脉插管用生理盐水润滑一下，插入动脉插管。动脉结扎线提前要湿润一下，结扎一定要牢固。静脉插

7、管：先要强调一下，我们做颈外静脉插管是为了输血输液，所以一定要避免进去气泡，防止发生气栓，所以静脉插管要事先通满生理盐水，排净里面的气泡。怎麽排气泡呢？(讲一下三通针管的使用)先夹闭近心端，再结扎远心端，同学们考虑一下是为什麽。是为了让静脉充盈一会儿，剪口的时候好剪一些。在靠近远心端剪口，插入静脉插管以后，可以松开动脉夹，向静脉内送入一段，然后结扎。插管完成以后，为了防止插管滑脱，我们可以把结扎线顺着插管的方向捋直，用胶布把它们固定在一起，再把插管固定在兔头固定器上。8.描记正常血压曲线：定基线，

8、用四导生理记录仪描记一段正常血压（5分钟左右）9.股动脉放血：放血的时候要注意要使血液顺着瓶壁流下来，而不要使血液直接滴入瓶内，以免损伤红细胞。在观察的过程中，要有同学负责看护家兔，防止发生剧烈的挣扎，造成插管滑脱。有同学负责观察血压，当血压降到45mmHg以后，停止放血，如果血压回升，就再放血；如果血压低于了45mmHg，就从静脉回输放出的血，使血压恒定维持在45mmHg左右1个小时。10.分组抢救①回输余血，5分钟内输完。②回输余血和生理盐水（15ml/kg），5分钟内输完③回