常规真核表达与鉴定

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1、1常规真核表达与鉴定——刘宗梁2013-10-192一、真核表达概述;二、常用真核表达系统;三、细胞与载体的选择;四、哺乳动物细胞转染;五、Western-blot法对转染结果的检测;六、间接免疫荧光法(IFA)对转染结果的检测;七、Cell-ELISA法对转染结果的检测;主要内容:3一、真核表达概述1、真核表达:通过将外源基因克隆到真核表达载体,并转染到合适的真核细胞中,最终获得外源目的基因高效表达产物的过程。2、真核表达相对原核表达的优点:在真核表达的过程中,可以通过真核细胞的转录及修饰系统(如甲基化修饰

2、、糖基化修饰、乙酰化修饰等)获得具有一定构象和生物活性的蛋白质;表达目的蛋白更的结构及生物学功能(如免疫原性等)更接近于该蛋白的天然状态,且表达的蛋白不存在原核表达中“包涵体”这一现象。3、真核表达缺点:表达量低,一般难以持久表达。4二、常用真核表达系统1、毕赤酵母表达体系:酵母细胞表达系统蛋白表达水平高,生产成本低,但纯化难度大。2、慢病毒表达系统:商品化的慢病毒表达系统(如Lenti-X)在病毒包装时获得VSV-G泛嗜性重组慢病毒,通过膜质偶联和膜质融合的方式感染靶细胞,可感染几乎所有类型的哺乳动物细胞。

3、3、哺乳动物细胞表达体系:对蛋白的加工与修饰与酵母及昆虫表达系统完全不同,可通过脂质体等直接将外源表达质粒导入哺乳动物细胞,进行表达。哺乳动物细胞产生的蛋白质更接近于天然蛋白,但其表达量低。54、杆状病毒昆虫细胞表达体系:蛋白表达水平高,可长晶体,多用于蛋白结果与功能的研究,但重组质粒构建及融合十分复杂。6三、细胞与载体的选择1、常用于表达的哺乳动物细胞:COS-7、BHK、293T、Sf-9、Sf-21等,具体选择可根据实际需要或者表达载体所含的表达原件等进行选择。2、表达质粒的选择:常用的真核表达质粒有p

4、CAGGS、pCDNA3.1、pEGFP等(均为SV40origin)。3、某些特殊的表达载体:如反向遗传表达载体,昆虫表达系统载体等。7四、哺乳动物细胞转染1、引物设计:构建重组真核表达质粒,一般在引物设计时首先会在引物中引物一些能够促进蛋白表达(如Kozak序列)或者便于后期检测的序列或标签(如flag、HA、His等),注意这些序列在引物中的位置。2、实验材料:真核表达细胞系、DMEM、FBS、OPTI-MEM、PBS、trypsin、携带有外源基因的重组质粒(去细胞内毒素法抽提)、转染试剂(或仪器)、

5、细胞计数器、盖玻片、六孔板等。3、转染细胞密度约2~5×106/mL,一般在细胞铺板后12~18h内进行转染,转染的质粒要测定浓度,按2ug/孔进行。8细胞转染步骤——以DFV-E基因转染cos-7细胞为例1、cos-7细胞消化后计数,铺六孔板,培养12~24h,观察细胞生长情况,至适宜密度(铺板后的细胞尽可能在24h内进行转染,一般选择过夜)即可进行转染。2、质粒及脂质体处理(1)及脂质体:脂质体为4、6、8uL/孔(脂质体+OPTI-MEM,250ul/1.5tube,孵育5min)(2)质粒:质粒终浓度

6、分别为2、3、4ug/孔(质粒+OPTI-MEM,250ul/1.5tube,不需孵育,在脂质体孵育5min中的过程中,把质粒配好)93、将第二步中(2)加入(1)中,混匀,不要剧烈吹打,孵育20min(在两者作用的20min时间内,洗涤细胞)4、细胞的洗涤:先弃掉原培养液,以维持液DMEM(未加血清)洗涤两遍1mL/孔;再用OPTI-MEM洗涤一遍,约1mL/孔。细胞洗涤也可用预热的PBS或者Hank's液洗涤,最后一遍洗涤最好使用维持液。5、将六孔板中的以上液体弃掉,再加入1.5mL的OPTI-DMEM;

7、将孵育的脂质体及质粒(500uL/孔)均匀滴入其中,轻摇六孔板使之混合均匀。106、将六孔板放入培养箱,一般5~6小时后换液,具体是否要换液根据细胞具体生长状态进行调整。7、弃去原培养液,补加2mL/孔的OPTI-MEM,或者加入2mL/孔的含10%血清的DMEM培养基,继续培养至36~48h。8、培养至48h后收细胞即可停止培养,然后进行表达蛋白的鉴定。若用IFA法检测,则在此处即可进行细胞固定;若进行Westernbolt法检测,则此处需要将细胞消化下来,裂解,然后进行SDS-PAGE,最终通过WB检测。

8、9、转染时注意做空白细胞对照和空质粒转染对照。11五、Western-blot法对转染结果的检测1、培养至48h后收细胞(视细胞状态决定何时收集细胞),弃去六孔板中的培养液,然后以胰酶消化500uL/孔、作用1min。2、以预冷的PBS反复吹打洗脱细胞,PBS1mL/每孔(最好再用PBS500uL重复洗细胞孔一次,彻底收集所有的细胞),为了提高细胞量,可做两转染孔合一管。3、吸取消化下来的细胞于1.

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