线虫研究相关技术

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1、线虫研究相关技术1•线虫的培养和分离(1)破开己感染南方根结线虫的芹菜根系,在实验室内通过贝尔曼漏斗法提取虫体。从所得虫体屮挑取卵囊,卵囊用0.2%次氯酸钠溶液消毒0.5min后,经无菌水冲冼。置卵囊于无菌水屮孵化,取2d后孵出的线虫(2龄线虫,简称J2)供测定用。(刘晟,等,2009)(2)根结线虫:挑取人工接种南方根结线虫的番茄根,用组织捣碎机打碎,依次过200、325、500目线虫标准筛,用无菌水冲洗500目筛上的虫卵置于无菌水中孵化,取第2d孵化出的活幼虫(2龄幼虫,简称J2)供测试。(赵卫星,等,2006)o(3)线虫的扩大培养:将采集到的受马

2、铃薯严重危害的马铃薯薯块用自来水冲洗干净,剖开病薯,用刀切成薄片,然后用银子将病薯撕成小块,待用。在漏斗底部铺上两层餐巾纸,将切好的病薯小块放入漏斗中加入无菌水,下面用带止水夹的橡胶管相连,每隔12h左右打开止水夹用烧杯接取橡胶管中下部的液体备用o将分离到的线虫用无菌水洗出,冲入无菌的指型管中,用0.5%的次氯酸钠消毒2min,然后用无菌水冲洗2〜3遍,使线虫自然沉降或用离心机使线虫快速沉淀(6000/rpm,3min)。再在离心管屮加入各约SOOmg/kg的链霉素(100万单位/g),保持lh,离心后吸出消毒液。再用无菌水冲洗3遍,定容到一定体积后放在

3、4°C冰箱中保存备用。在PDA(约20ml)平板培养基上接入灰葡萄砲菌cinereaPers),25°C温箱中暗培养。待菌丝长满整个培养皿后,在培养基中央刻一小口,加入消毒过的马铃薯茎线虫约500条,将培养皿用封口膜(Parafilm)包好并正置放入25°C温箱中黑暗培养。接种培养2〜3d后将培养皿皿盖朝下放置,继续培养35〜40d左右,然后将培养皿皿盖上的线虫用无菌水冲洗到烧杯中备用(闫磊,2007)o(4)线虫的扩大培养:参照刘维志(2000)描述的方法,略作改进。釆用根结线虫的适宜寄主番茄(品种为毛粉802)进行繁殖,貝体方法为:采用常规方法育苗,

4、当待接种的番茄苗长出3〜4片真叶时,将其移入装有高温灭菌砂壤土(粗砂:±=1:1)的花盆中,每盆2株;摘取南方根结线虫卵囊或制各南方根结线虫二龄幼虫(J2)悬浮液接种,每盆接种100个卯囊或5000个卵或幼虫:接种后花盆摆放在日光温室工作台上,根据情况,每2〜3天浇水一次,每隔10天施植物全营养液一次;培养40〜60天,扣盆取根系摘卵囊或取土分离根结线虫,供试。卵的分离及卵悬浮液的制:各参照刘维志(2000)的方法,将带有大量根结和卵囊的病根小心冲洗干净,剪成lcm长根段,并与适量水一起放入组织捣碎机中,搅拌20〜30s,将搅拌器中根碎片同溶液一并倒入孔

5、径为75um(200目)、26pm(500口)组筛内,用自来水冲洗75urn网筛上的根碎片,以便尽可能在孔径26urn网筛上冋收线虫卵,将孔径26urn网筛内的线虫卵收集于烧杯屮,定容,并在休式显微镜(帯有底光源)下计数。2•杀线虫活性测是(1)测定各萃取物对南方根结线虫的杀虫活性。方法如下:将各组分减压浓缩后用少量丙酮(低于1%)溶解,滴加少量吐温・80(低于0.1%)乳化,加蒸憾水配制成lOOpg/mg的约液,取ImL用J2悬浮液(100头线虫/mL)稀释2.5倍,置于(28±l)r的培养箱内,分别于24、48h后观察皿的存活情况,统计线虫的存活数、

6、死亡数,计算校正死亡率。以清水为对照,每个处理3次重复,线虫死亡记数标准参照文献,即线虫僵直不动的为死虫,呈弯曲蠕动状态为活虫。杀线虫活性的评价标准按Chandravadana等的方法进行。(赵卫星等,2006)o(处理线虫死亡率-对照线虫死亡率)线虫校正死亡率(%)=x100(1-对照死亡线虫率)(2)液浸渍法:各供试提取物以蒸徭水(含(p<2%的丙酮)配制成试验设置浓度的溶液,取1.5mL溶液加入24孔细胞板内,然后用胶头滴管加入供试松材线虫50〜100条,每孔作为1次重复,每处理4次重复,对照为蒸储水(含林2%的丙酮),置25°C培养箱处理24、4

7、8和72h后,在光学显微镜(4x)下检查线虫死亡数.以虫体发直、拨针拨动不活动的虫体放人清水24h后仍不能恢复活动的确定为死亡状态,按下式计算校正死广率。(马伏宁等,2009)(处理组死亡率-对照组死亡率)校正死亡率=x100%(1-对照组死亡率)(3)室内毒杀活性测定(药液浸泡法):试验在24孔细胞培养板内进行,先将同样体积(VJ定容好的线虫悬浮液注入样品孔内,再根据试验浓度按式(3)计算需要补充添加的无菌水(V2),最后加入相应量的药剂母液(V3),混合均匀,置于25°C培养箱中,每处理4个重复,每重复50〜100条线虫。处理后24h,48h,72h

8、分别检查各处理的线虫死亡与存活情况,按下列公式分别计算线虫死亡率和线虫的校正死亡

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