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时间:2019-09-15
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1、Amaxa核转染技术实践研讨与4D原位转染技术讲座唐胜伟应用工程师NFHandling–OptimizedProtocolsStep1Step2Harvestcellsofinterest.Mix&combineTransfertoanAmaxa®CertifiedCuvette.Nucleofector®SolutionwithSupplementCellsDNAorsiRNAStep3Step4Step5SelectNucleofector®RinsecuvettewithTransfertoculturedish.
2、ExpressioncanbeProgram.Insertcuvette.culturemediumdetectedassoonas3-8hourspostPressstartbutton―X‖Nucleofection®.Part1案例分析案例一•NK-92•终体积•培养密度案例二•3T3-L1(Ad10thday)•离心力•清洗液案例三•mouseTcell(cd4+)•原代细胞的健康状况•磁珠分选种类•刺激物的添加时间案例四•DC•种属•成熟与否•人•AmaxaHumanDendriticCellNucleofec
3、torKit•0.5–2x106cells•大鼠•200xgfor10minutes•(国外推荐)AmaxaHumanDendritic•U-002CellNucleofectorKit•转完加500ul培养基Ⅰ•8x105cells•12孔板500ul培养基Ⅱ•200xgfor10minutes•终体积1ml(1:1)•u-002•检测4-8小时、24小时•u-015(结果)•y-001•小鼠•转完加500ul培养基Ⅰ•Amaxa®MouseDendriticCell•12孔板500ul培养基ⅡNucleofector
4、®Kit•终体积1ml(1:1)•2.5x105cells•检测4-8小时、24小时•300xgfor10minutes•不成熟Y-001•成熟AN-001成熟细胞转完后需室温下放10分钟再加400ul预热培养基•转完加400ul培养基Ⅰ•48孔板400ul培养基Ⅱ•终体积0.8ml(1:1)•检测4-8小时、24小时案例五•MSC•种属•操作•HumanMSCkit•DogMSCcell•500,000cells/sample•PmaxGFP2ug•Program(Susanadvice)•A-020•T-020•X-
5、001•X-005•L-029•24hFluorescencemicroscope•Photoimage(Y)•X-001,X-005best•transfecteffection80-90%案例六•原代神经元•消化过度•成纤维细胞案例七•hepG2•非ATCC或自建系%TransfectionefficiencyATCC120DSMZ100806040200HEK293K562CHO-K1HeLaNIH/3T3案例八•复苏后几天内全部死•无阴性对照亡案例九•THP-1•对质粒的量敏感(-)案例十•质粒扩增后表达不稳•无
6、阳性对照定案例十一•microRNA或siRNA剂量效应•与干扰效率Part2要比其他任何人都更了解自己的细胞与实验!•Themoredifficultthe•OttawaHealthcelltype,themoreResearchInstitutenucleofectionisvalued-成功转染的影响因素确认DNA纯度OD值>1.8质粒不含内毒素转染体系终体积<120ul确认细胞培养无支原体、细菌、酵母等污染细胞的离心力不要太大!!!操作细胞的影响最理想的条件–请参照每种细胞的特定protocol:核转染之前的
7、细胞状态会影响最终的结果指数期增长的细胞传代的代数较少没有污染克隆以及不同细胞捐赠者的差异(如:ATCCvs.DSMZ)培养条件核转染之前1-2天,细胞需要传代,以保持细胞在指数生长期冻存的细胞需要在37°C预培养1-2小时。刺激的细胞可能与未刺激的细胞核转染条件不同如IL15,antiCD3,antiCD28,withTcells保持细胞在转染后4小时内培养条件不变支原体污染Dr.JudyKantor,DirectorofR&D,ATCCHeLacellsinfectedwithHeLacellsunin
8、fectedMycoplasmafermantansProgramI-013noDNAnoprogram+DNAProgramI-01357.7%23.0%GFP++DNAGFP+Deadcellsgatedout–xaxisonly细胞来源的差别%TransfectionefficiencyATCC120DSMZ1
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