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时间:2019-08-05
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1、遗传学实验人类外周血培养及染色体核型分析一、实验目的:1.学习外周血淋巴细胞悬浮培养的原理和方法;2.利用培养后进行分裂的细胞制备人类染色体标本;3.利用人类染色体核型分析软件进行核型分析。二、实验原理:1、植物血凝素的作用外周血中的淋巴细胞几乎都是处在G0或G1期,一般情况下是不分裂的。当在培养基中加入植物血凝素(PHA)时,这种小淋巴细胞受到刺激后转化为淋巴母细胞,进而开始进行有丝分裂。2、秋水仙素的作用:秋水仙素(colchicine)可以抑制细胞纺锤体的形成,使处在分裂的细胞停留在中期。因此利用秋水仙素处理可以获得许多同步的中期分裂细胞。使用秋水仙素处
2、理会引起染色体在一定程度上的收缩,因此在处理时间和浓度上要合适。3、低渗的原理:徐道觉(T.C.Hsu)等于1952年发现在固定细胞之前使用低渗液进行处理,可以使细胞的核膜吸水膨胀,滴片后细胞破裂,染色体分散开来,在显微镜下易于观察和统计,染色效果也明显提高。这种技术被广泛采用后,使人类染色体分析技术得到了发展。4、核型和带型:核型(karyotype):是指染色体组在有丝分裂中期的表型,是染色体数目、大小、形态特征的总和。在对染色体进行测量计算的基础上,进行分组、排队、配对,并进行形态分析的过程叫核型分析。将一个染色体组的全部染色体逐条按其特征画下来,再按长
3、短、形态等特征排列起来的图称为核型模式图,它代表一个物种的核型模式。带型(bandingpattern)即染色体带型。借助细胞学的特殊处理程序,使染色体显现出深浅不同的染色带。染色带的数目、部位、宽窄和着色深浅均具有相对稳定性,所以每一条染色体都有固定的分带模式,即称带型。常用的显带技术所显示的带有Q带、G带、C带、R带、T带等。就每一种分带技术而言,每一染色体的带型是高度专一和恒定的。三、实验用具及试剂:实验仪器及用具:恒温培养箱、离心机、恒温水浴箱、冰箱、显微镜、显微数码摄像系统、染色体分析仪;培养瓶、注射器、微量移液器、枪头、吸管、离心管(10ml)、载
4、玻片、烧杯、量筒。.2.实验试剂:外周血淋巴细胞培养基2%碘酒75%酒精20µg/ml秋水仙素0.075mol/LKCl溶液甲醇冰醋酸Giemsa原液1/15mol/L磷酸缓冲液四、实验步骤:1、采血:将皮肤常规消毒后静脉采血约0.5ml。2、种血及培养:将采到的血样立即接种到培养瓶内,每个培养瓶接28或30滴(约0.5ml),轻轻摇匀后将培养瓶放在37℃温箱中培养72小时。培养过程中,每天应轻轻摇动两次培养瓶。3、秋水仙素处理:在终止培养前2-3小时,向培养瓶中加20µg/ml的秋水仙素3滴,轻轻摇匀后继续培养到72小时。4、制片:(1)离心:从温箱中取出培
5、养瓶,用吸管将培养液转入10ml的刻度离心管内。2000转/分,离心10分钟。(2)低渗:弃去上清液。加入37℃预热的0.075mol/LKCl低渗液8ml,用吸管轻轻吹打匀,放在37℃恒温水浴中40分钟。(此时配固定液:甲醇225ml+冰醋酸75ml)2000转/分,离心10分钟。(3)预固定:弃去上清液,在离心管中加入现配的预温的甲醇-冰醋酸(3:1)固定液约1ml,轻轻混匀,室温固定5分钟。(4)再次离心:2000转/分离心10分钟。(5)第一次固定:弃上清液,加入固定液约8ml,立即用吸管吹打使之成细胞悬液,室温固定20分钟。2000转/分离心10分钟
6、。(6)第二次固定:同第一次固定。(7)弃上清液,加入固定液0.5ml,用吸管吹打使均匀后制成细胞悬液。用封口膜封口,4℃保存备用。(8)滴片:在30-40cm高处将细胞悬液滴在预冷的载玻片上,注意动作应迅速,避免载片升温。(9)染色:用10%吉姆萨染液扣染30分钟,染色结束后用清水将浮色冲去,干燥后即可进行镜检。(10)照相:在显微镜下寻找分散较好的分裂相(核型),再置于显微照相仪下拍摄照片,并保存。(11)核型分析:应用核型分析软件,进行染色体核型分析。核型分析仪及核型分析五、注意事项:1、秋水仙素处理时间过长,分裂细胞多,染色体短小;反之,则少而细长。都
7、不宜观察形态及计数。故秋水仙素的浓度及时间要准确掌握。2、低渗使红细胞膜破裂,淋巴细胞膨胀,低渗处理浓度及时间要适当。且低渗后混匀细胞一定要轻,否则引起膜破裂、染色体散失。3、离心前配平,离心速度过高,细胞团不易打散;反之,细胞易丢失。4、固定液应在使用前临时配制。5、载玻片一定要洁净,否则染色体分散不好。六、实验结果与分析:染色体核型分析:人类每个体细胞有46条染色体,22对常染色体和一对性染色体,男性为46,XY;女性为46,XX。A组(No.1~3):是最大的一组染色体,它们的着丝粒在中部或几乎在中部,为中部着丝粒染色体;B组(N0.4~5):为两对大的
8、亚中部着丝粒染色体,它们有明显的长臂和
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