《纯化细胞的方法》PPT课件

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1、细胞纯化细胞纯化方法分类自然纯化人工纯化自然纯化即利用某一种类细胞的增殖优势，在长期传代过程中靠自然淘汰法，不断排挤其他生长慢的细胞，最后留下生长优势旺的细胞，达到细胞纯化的目的。留下的细胞：成纤维细胞、突变细胞、肿瘤细胞缺点：（1）无法按需要和实验目的选择细胞（2）花费时间长一、自然纯化1、细胞因子依赖纯化法是通过加入某些特殊的细胞因子而纯化出只依赖于这种细胞因子生长的细胞系.人和动物组织中某些细胞需要有特殊的细胞因子存在的环境才能长期存活和生长繁殖,如白细胞介素-2（IL-2）SHI他细胞生长所必须的细胞因子,B细胞

2、生长因子是B细胞的生长因子,体外培养中淋巴细胞若加入IL-2就可使T细胞生长繁殖,形成IL-2依赖的T细胞,如CTLL-2细胞系,而其他细胞则自然被淘汰,采用此法还建立了IL-6依赖的细胞系,如B9、CTD7细胞系.二、人工纯化人工纯化是利用人为手段造成对某一细胞生长有利的环境条件,抑制其他细胞的生长从而达到纯化细胞的目的.主要有以下6种方法.1.细胞因子依赖纯化法2.酶消化法3.机械刮除法4.反复贴壁法5.离心分离法1、速度沉降分离法2、等密度梯度沉降分离法6.单细胞克隆培养2、酶消化法：酶消化法是比较常用的纯化方法,

3、不仅对贴壁细胞可行,能利用上皮细胞和成纤维细胞对胰蛋白酶的耐受性不同,是两者分开,达到纯化的目的；另外对贴壁细胞与半贴壁细胞及黏附细胞间的分离纯化也是十分有效的.上皮细胞与成纤维细胞的分离纯化：两者在胰蛋白酶的作用下,由于成纤维细胞先脱壁,二上皮细胞要消化相当长的时间才脱壁,特别是在原代细胞初次传代和早期传代中两种差别尤为明显,故可采用多次差别消化方法将上皮细胞和成纤维细胞分开,方法步骤如下.采用常规消化传代方式将0.25%胰蛋白酶注入培养瓶内两次,每次加1ml（25ml培养瓶）,来回轻摇1-2次,使胰蛋白酶流过所有细胞

4、表面,然后倒掉.盖好瓶塞,将培养瓶放在倒置显微镜下观察,发现成纤维细胞变园,部分脱落,立即加入2ml有血清的培养基终止消化.用弯头吸管轻轻吹打成纤维细胞生长区域（可事先在镜下用记号笔在培养瓶上划出记号）.吹打时不要用力,也不要吹打上皮细胞生长区域.吹打结束后,再用少量培养基漂洗一遍,然后加入适量培养基于瓶内继续培养,也可重复上述操作再进行一次.隔几日后或下次传代时,再进行上述操作,进过几次处理,就可将成纤维细胞去除或者将两者分开.3、机械刮除法：原代培养时,如果上皮细胞和成纤维细胞分为区成混杂生长,每种细胞都以小片或区域

5、性分布的方式生长在瓶壁上.可采用机械的方法去除不需要的细胞区域而保留需要的细胞区域,其方法步骤如下将要纯化细胞的培养瓶,在净化室内放在倒置显微镜监视下进行操作.用硅橡胶刮子在不需要生长的细胞区域推划,使细胞悬浮在培养基中,注意不要伤及所需细胞.推划后用培养基冲洗振摇两次倒掉,即可将培养基加入原瓶继续培养,数日后如发现不需要的细胞又长出,可再进行上述操作,这样反复多次可以纯化细胞.操作过程中要严格无菌操作,防止污染.4、反复贴壁法：成纤维细胞与上皮细胞相比,其贴壁过程快,大部分细胞能在短时间内（大约10-30min）完成附

6、着过程（但不一定完全伸展）,而上皮细胞（大部分）在短时间内不能附着或附着不稳定,稍加振荡即浮起,利用此差别可以纯化细胞.将细胞悬液接种在一个培养内（最好培养基内不含血清,此时上皮细胞贴壁更慢）静置20min.在倒置显微镜下观察,见部分细胞贴壁,稍加摇动也不浮起时,将细胞悬液导入另一培养瓶中.继续静置培养20min,然后重复上述操作后,即可将上皮细胞和成纤维细胞分隔开,在第一瓶和第二瓶以成纤维细胞为主,往后几瓶即以上皮细胞为主,下次传代时再按上述方法处理,就可使两者达到完全分开的目的.5、电烙筛选法在贴壁细胞转化时,往往在

7、培养瓶的细胞层中会出现分散的转化灶,转化灶区域细胞密集、排列规则,有明显生长趋势,与周边未能转化的细胞有明显的区域界限,此时即可用机械刮除法取出未转化细胞,也可用电烙筛选法烫死未转化细胞而保留转化灶细胞.倒去旧液,并用记号笔划出转化灶的区域.用加热的微型电烙器（类似焊接用的电烙铁）将转化灶周边的细胞全部烫死,只保留转化灶细胞.在单细胞克隆筛选时,也可用此法将单个细胞周围的细胞杀死.然后在适应性培养基中（50%是旧液）继续培养,即可达到纯化的目的.单细胞培养（克隆培养）有限稀释法将需要再克隆的细胞株自培养孔内吸出并作细胞计

8、数，计出1mL的细胞数。用培养液稀释，使细胞浓度为50～60个/mL，于96孔培养板中每孔加0.1mL(五六个细胞/孔)。接种2排，剩余细胞悬液用HT培养液作倍比稀释，再接种2排，如此类推，直至使每孔含0.5～1个细胞。培养7～10d后，选择单个克隆生长的阳性孔再一次进行克隆。一般需要如此重复3～5次，直至达100%