综述：大鼠灌胃给药方法——修改版

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1、综述：实验大鼠灌胃给药方法简介徐意摘要:本文主要介绍了几种大鼠经口灌胃给药的方法。并介绍各年龄段等方面大鼠（删）在灌胃中注意事项。关键词:大鼠；灌胃；给药。随着科学（医学）技术的发展,动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验目的、实验动物的种类及药物剂量的不同,需对实验动物实施不同的给药方法。经口灌胃给药方法是一种重要的给药途径。[1]灌胃给药能够准确掌握给药剂量、控制给药时间,在营养学和药物学动物实验中有重要意义。在此，作者根据操作经验，对各实验动物灌胃方法加以改良，并用于实验操作中，关

2、于大鼠的灌胃方法介绍如下。1大鼠解剖生理特点:[2]SD大鼠与Wistar大鼠的解剖生理特点相似：①腔粘膜幼嫩，易受损伤引起出血。②咽喉部神经反射较差，自我保护能力差。药液溢出时极易呛入肺内而致死。③管长，自口角至责门为5.5士0.5cm。④解剖位置低，常达腹中部甚至腹下部。胃的外形似蚕豆状，胃底部和幽门部均高于责门部。责门括约肌紧张度较低，灌胃时药液易外溢。⑤胃内容积为0.6士0.2ml，但胃内常常是积满汁液，压力较大，也是药液易于外溢的原因。2特制灌胃管的制作（与题无关）2.1软质灌胃器的制

3、作选取临床用小儿头皮针(带针座)塑管一段。放置60°C左右热水中浸泡2~3min，取出后迅速将其拉长，使该塑管变细，直径约为1mm。剪取带针座的一段长约6cm，再将游离端磨光滑即成。最后连干注射器上备用。2.2硬质灌胃器的制作取12号普通注射针头，首先用粗锉刀把针头锉掉,然后用细锉刀把锉掉部位锉平、锉光、再用沙纸磨平。加工成有一定弧度,针体长约5cm并连接1ml注射器,即成大鼠灌胃器。灌胃时在针头处套上长2cm硅胶管,比针头稍微长0.1cm,太长容易被动物咬掉。以防灌胃时损伤动物食道。另外在锉针

4、头时或加工弧度时用力要均匀,否则就会把针管弄扁,以影响通畅。3　大鼠(固定)保定操作[1~3]（文献要标注到具体的位置）3.1清醒大鼠的保定大鼠在未受到强烈刺激情况下性情虽较温顺,但捕捉时也要提防被其咬伤或抓伤手指,因此需要戴手套捕捉。保定时也可先用一块湿的沙布或毛巾（面积与大鼠大小相符或稍大）盖在大鼠身上，既可以减少对大鼠身体的刺激，又可以防滑，并给初学灌胃者有一种不怕的感觉。大鼠灌胃的关键是左手把大鼠头固定好,使大鼠头不能随意摆动。先用右手将大鼠尾巴提起，置于实验台上,用左手的拇指和食指抓住

5、大鼠两耳后颈背皮肤,并尽量用拇指将大鼠左腮部往后拉,其余三指有意识的轻按大鼠背脊,提起大鼠使其处于站立状态,并使大鼠的腹部轻趴在靠台上（靠台可用方形木块、三角尺或者硬盒代替，高度与大鼠体型相当）。实验者也可利用身体，单脚踩台阶或取坐位，大腿前侧与身体腹侧呈直角或钝角，使大鼠后肢踩于实验者大腿前侧，鼠身垂直，上肢及腹侧伏靠于实验者身体。仍以左手食指和拇指固定大鼠头部使其张口，左手前三指推直大鼠颈后部和枕部使其头后仰。且往往利用实验者身体比使用直角板操作更便捷，大鼠更容易耐受。握力不可过大，勿握其颈

6、部，以免窒息死亡。然后将大鼠置于左手心中，拉直后肢,大鼠体较大，所以不能象小鼠那样可以把尾巴压住，根据我们多年的实验经验，可将大鼠尾巴平放于实验台并相对左手偏右，用左手手腕部位将尾巴压住固定，此时到灌胃结束左手不宜移动。以上保定操作适合400g以下大鼠，如果是15月龄左右大鼠（400g以上），由于其体积过大，单手不易保定，此时建议两人合作进行灌胃操作，一人将大鼠保定，一人灌胃。保定操作需一人两手合作，用左手的拇指和食指抓住大鼠两耳后颈背皮肤,具体操作与上述相同，而尾巴部分用右手将其向后拉住保定。

7、如大鼠保定时强烈挣扎，可以使其原地转圈10次左右，使其稳定下来，再进行以上操作。3.2麻醉大鼠的保定[3]部分实验需要对大鼠进行全身麻醉，例如研究两种药物甲和乙的协同或拮抗作用,甲药物需要对大鼠进行全麻下颈静脉注射，给药后30min需灌胃给予乙药物,此时大鼠尚处于全麻状态。还有其他实验需要对大鼠进行全麻手术，术后给药，若等待大鼠完全清醒则耗费时间(评估麻醉给药和清醒给药对实验结果的影响无差别后，方考虑麻醉时灌胃)。为实现给药时间准确或提高效率等目的，对全麻状态下的大鼠，仍可实现顺利灌胃。将麻醉大

8、鼠侧卧，头高臀低位即可。4　大鼠灌胃操作[1~3]4.1清醒大鼠的灌胃选用硬质灌胃器灌胃，大鼠保定好之后，此时注意将大鼠颈尽量拉直，以使食道变直利干插管。从一侧口角插入胃管，沿上腭，咽后壁顺其吞咽动作进入食管达胃内。注意插管深度，在胃管通过咽喉部，胸部约气管分支的高度时，插入速度要慢，同时要注意插管过程中大鼠的反应，如果播管顺利通过这两个部位，动物无强烈挣扎，无明显缺氧等表现，方可继续插入使深度达隔下至胃内。否则应拔出后再插、（重插时间把握，注意动物状态）当胃管插至胃内时，可稍稍回抽针栓，见无气